jean-jacques B
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Anyphaena ( éventuellement possible)
Ce matin sur le sol se trouve une petite araignée morte, je vous en propose un portrait réalisé avec le microscope à écran Tomlov.
La taille de l’abdomen plus céphalothorax se situe autour de 9 mm.
Aspect ventral :
Examen des pattes :
Détail sur les griffes de l’extrémité distale de la patte :
Les chélicères :
Les palpes:
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Ciliés - Immobilisation des ciliés - Nutricia
La grande difficulté quand on s’intéresse aux habitants des mares - des bassins et de bien d’autres endroits est leur extrême mobilité.
Ils tournent sans arrêt, se dérobent, ne nous laissent aucun répit dans les modifications de focales bref nous désespèrent.
De très nombreux procédés sont proposés mais aucun n’est vraiment satisfaisant. (entre autres l’ utilisation des graines de Psyllium).
Entomopixels ,en nous exposant ses techniques de prise de vue rapide des gouttes d’ eau , nous révèle qu’il utilise le Nutricia Nutilis Clear .
Ce produit est un épaississant de l’ eau pour les personnes qui avalent de travers à la moindre quantité de liquide dans leur bouche .
Pour notre cas la conduite à tenir est très simple sur la lame porte objet on place une goutte de notre échantillon et on y mélange la petite pointe d’un petit couteau de poudre - la prise en masse est immédiate et la transparence de l’ eau totalement respectée.ne gênant pas l’ observation au microscope .
Les protistes ne sont pas tués ou n’éclatent pas ; par contre leur mouvement est extrêmement ralenti permettant ainsi de les examiner sans peine même à fort grossissement. Bref apparemment l’ idéal .
A l’expérience je ne suis pas certain que toutes les espèces soient indifférentes à ce produit Donc les vieilles techniques sont toujours d’actualité en particulier peu d’ eau et s’ avoir attendre que tout ce petit monde se calme
Ce produit n’ est pas en vente en France mais uniquement en Belgique - il est sur le site de la pharmacie en ligne Viatat :
La prise de cette photo n’a présenté aucune difficulté. Ce qui ressemble à un Depanomonas se révèle englué dans son milieu épaissi et n’arrive plus à se déplacer laissant tout le temps pour le prendre en photo.
Jean-jacques
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Bonjour tous
Suite à cette remarque sur le caractère un peu délavé des images j'en ai repris une avec une diminution de la luminosité
résultat :
Cela me semble mieux en effet
Daniel ton tardigrade est superbe ,je ne désespère pas de trouver un petit frère.
Amicalement
Jean-Jacques
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Mousse : lieu de vie
Dans le but de trouver des tardigrades , de la mousse a été prélevée en lisière de foret sur un vieux tronc un matin pluvieux.
La mousse a été comprimée pour retirer l’eau. Cette eau a été explorée
Déception… Il n’y avait aucun tardigrade. Par contre on a constaté un très grand nombre d’amibes à thèques, d’espèces différentes et en particulier d’une amibe couverte de cils.
On trouve comme nom Euglypha ciliata qui est décrit comme vivant dans les mousses.
On trouve beaucoup plus des amibes de type Difflugia
Par ailleurs on trouve dans notre prélèvement l’image suivante :
A qui a t’on à faire ?
Jean-Jacques
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Gammarus
Un prélèvement a été fait dans une petite mare dans la forêt. On y découvre la présence habituelle de Gammarus.
Des photos ont étaient prises avec le microscope à écran.
Taille moyenne de 1 à 2 cm
Règne Animalia
Embranchement Arthropoda
Sous-embr. Crustacea
Classe Malacostraca
Ordre Amphipoda
Famille Gammaridae
Genre
Gammarus
Fabricius, 1775
Il existe 80 espèces répertoriées (un certain nombre d’espèces sont en cours de disparition du fait de la pollution des ruisseaux).
En conclusion les Gammarus sont des crustacés très faciles à observer et avec un microscope qui est extrêmement maniable pour prendre des photos
Jean-Jacques
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Comment préparer les diatomées si on s’intéresse à leur frustule
Technique :
Matériel
Quelques petites éprouvettes, pipettes plastiques et quelques petits flacons en verre (nombreux fournisseurs sur le Net )
Pour la table chauffante un chauffe plat fait l’affaire.
Pour l’étuve les fours de cuisine sont utilisables - souvent leur thermostat va de 30 à 250 °C
Pour la centrifugeuse on trouve sur amazone à moins de 140 euros fabrication chinoise - par contre avant de l’utiliser il faut lui faire un piètement lourd sinon elle se promène sur la paillasse .
Produits chimiques
Eau déminéralisée (grand magasin)
Eau oxygénée (H²O² 30 volumes (pharmacie)
Acide chlorhydrique de ménage (grand magasin)
Naphtax (faire venir d’ Angleterre Brunel microscopie UK . Dans ce cas il faut ajouter le diluant qui est le Xyléne ou le Toluéne ( vente en ligne site : Mon droguiste) puis qu’il n’ est pas possible de faire voyager ce type de solvant -On remplit donc le flacon contenant le Naphtax solide contenu dans le flacon dès son arrivée .
Tout commence par le prélèvement
Il faut brosser dans une petite cuvette les pierres et les algues sur lesquelles les diatomées habituellement reposent.
Première étape : enlever les substances organiques qui sont présentes dans le milieu.
Bien secouer le prélèvement pour l’homogénéiser
Remplir plusieurs tubes à essai y mettre 10 cc par tube des prélèvements.
Centrifuger 3 mn à moins de 2500 tours/ mn pour ne pas casser les frustules.
On peut faire plusieurs centrifugations de façon à avoir un surnageant clair.
Vider une grosse partie du surnageant avec une pipette.
Deuxième étape détruire les matières organiques
Mettre dans chaque tube centrifugé 3 ml H2O2 30 ml .Au-dessus de chaque tube mettre une bille en verre ( ce qui permet de fermer le flacon de manière non hermétique .)
Mettre les tubes dans un petit pot en verre contenant de l’ eau – maintenir à 100 degrés pendant 2 heures Normalement le milieu a blanchi - Sinon ajouter un peu d’eau déminéralisée dans le tube et poursuivre jusqu’ au blanchiment.
Ajouter dans chaque tube 1 à 2 ml d’Acide chlorhydrique du commerce.
Secouer les tubes et attendre 30 minutes la fin de la réaction
Faire un rinçage pour enlever les produis chimiques . Pour cela centrifuger les tubes à 2000 tours / m pendant 3 minutes .Enlever le surnageant et faire cela 3 fois
Troisième étape la préparation des lames
Dans un flacon contenant un peu d’eau déminéralisée faire le transfert de l’échantillon. Mais comme l’échantillon est souvent trop dense il faut le diluer
Pour ce faire dans un autre flacon mettre eau déminéralisée quelques ml (centimètre-cubes ).
Ajouter doucement au goutte à goutte sur l’échantillon jusqu’ à ce que l’ eau de flacon soit légèrement trouble - Homogénéiser le liquide en secouant le flacon.
Sur une lame porte objets mettre 2 couvre objets sur lesquels on va déposer avec précaution quelques gouttes de l’échantillon sans dépasser les bords
Ensuite on peut ajouter à l’ échantillon un peu d’eau et refaire un prélèvement cela permet d’ avoir des préparations à des dilutions étagées.
Soit laisser à l’ air libre pour attendre la déshydratation sur les couvre-objets soit placer dans une étuve à 30 degré ( à trop forte température les diatomées ont tendance à s’ agglomérer )
Une fois la préparation séchée pousser les couvre objets sur le côté de la lame et mettre au centre 1 gtt de Naphtax.
Retourner les couvre objets sur la goutte de Naphtax .
Appuyer un peu.
Pour faire évaporer le solvant placer des lames sur une plaque chauffante.
Appuyer un peu pour faire partir les bulles.
On peut ensuite gratter l’excès de Naphtax sur les côtés des couvre objets .
Etiqueter la lame date / origine:/nom binomial si on y arrive
Examen au X 1000
Vidéo de la réalisation du processus dans un laboratoire spécialisé.
Résulats :
Le problème majeur rencontré est celui de la séparation des Diatomées et des sédiments, je n'ai toujours pas la solution.
Jean-Jacques
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Chlorophyta
Depuis septembre la grille de la maison, qui est en PVC s’est couverte d’une couche verdâtre et hétérogène.
La période étant très humide un prélèvement est facile à faire.
L’examen au microscope montre la présence d’une algue.
Cette cellule fait 7 µm de large, elle est ovoïde, ses murs sont épais.
La plupart des cellules sont en cours de division.
Cet aspect fait penser à une algue du phylum Chlorophyta.
Dans le prélèvement je n’ai rencontré que des cellules en cours de reproduction végétative donc je n’ai pas trouvé de zoospores avec deux flagelles.
On peut proposer le nom de Chlorococcum minutum.
Jean-Jacques
J'en profite pour présenter tous mes vœux pour 2025 à tous les membres de MikrOscOpia.
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Bonjour Tryphon et Christian
Merci de vos réponses.
Christian ton Nauplius est comme le mien c'est à dire très agité. Pour prendre la photo j'ai posé sur le bord de la lamelle de la Xylocaïne à 2 %.
30 secondes plus tard il est devenu plus calme.
Amicalement
Jean-Jacques
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Nauplius
Pas loin de la maison il y a un lavoir sur le bord d’une petite rivière. Un prélèvement d’eau est fait.
Le Nauplius est une larve mais de quel crustacé ?
Jean-jacques
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Andrena
,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,,Famille des Andrenidae
Il y a quelques années au mois de Septembre sur un coteau bien ensoleillé du jardin on pouvait apercevoir une toute petite abeille. Elle passait sa journée à virevolter à 10 cm du sol. Généralement après octobre on ne la voit plus. Avec les années et toujours au mois de Septembre leur nombre a considérablement augmenté.
Cette année la colonie s’étale au moins sur 80 m².
Dans la pelouse on constate des petits trous correspondant à l’ouverture d’un terrier.
De ce terrier sort une et parfois plusieurs abeilles mais toujours en très petit nombre. Les trous de la colonie sont espacés d’une dizaine de centimètres.
Ces abeilles sont de petite taille autour de 1 cm.
Image de la tête
La tête a été plongée dans l’eau de javel pendant 48 heures :
Image des antennes:
Image du proboscite:
Images des ailes:
Système de fixation des deux ailes
Image des pattes avant :
Image de patte arrière:
Image de l’aiguillon :
Abeilles solitaires et terriers
Ces abeilles, souvent appelées abeilles solitaires ou andrena (pour l'un des genres les plus connus), ont un cycle de vie très particulier.
Un mode de vie différent des abeilles mellifères
Contrairement aux abeilles mellifères que nous connaissons bien, qui vivent en colonies organisées et produisent du miel, les abeilles solitaires ne forment pas de société. Chaque femelle construit son propre nid, généralement dans le sol, mais parfois aussi dans des tiges creuses ou des cavités.
Un cycle annuel bien précis
Nidification: La femelle creuse un terrier, aménage des cellules individuelles où elle déposera un œuf et de la nourriture pour la larve (un mélange de pollen et de nectar).
Développement larvaire: La larve se développe dans la cellule, se nourrit des provisions laissées par sa mère et passe l'hiver en diapause.
Émergence: Au printemps suivant, la larve se transforme en nymphe, puis en adulte. L'abeille sort du terrier à la fin de l'été ou au début de l'automne.
Reproduction: L'abeille adulte vit quelques jours, le temps de se nourrir, de se reproduire et de pondre quelques œufs ( nombres d’œufs ? )soit en reprenant le terrier initial pour une jeune femelle de l’ année soit en recreusant un nouveau terrier pour les autres - généralement autour du terrier de leur naissance - Mais comme il y a concurrence on constate que les jeunes reines doivent s’ ecarter des zones de terriers déjà creuses soit environ un espace de 10 cm autour de terrier le plus proche ..La colonie s’ etale donc doucement le terrier est bouché avec la terre une fois les œufs déposés.
Entre la première constatation d’ une Andrena dans le jardin et la taille de la colonie actuelle autour de 80 mètres carrés il a fallu 6 ans
Classification :
Règne Animalia
Embranchement Arthropoda
Classe Insecta
Super-ordre Endopterygota
Ordre Hymenoptera
Sous-ordre Apocrita
Super-famille Apoidea
Famille Andrenidae
Sous-famille Andreninae
Genre
Andrena
Référence
https://manche-nature.fr/wp-content/uploads/2017/12/Argiope80-81_Andrena_2013.pdf (cette référence fait le tour de la question portant sur les Andrena).
Jean-Jacques
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Bonsoir Solito de Solis
En Normandie on utilise sur les fruitiers atteints de la cochenille un traitement à l’ huile en pulvérisation .
L’huile d’hiver (aussi appelée huile au stade dormant, huile de dormance, huile pour traitement d’hiver, etc.) est une huile épaisse appliquée normalement au printemps, à la fonte des neiges, mais on peut aussi l’utiliser à l’automne, après la chute des feuilles. On l’applique sur les végétaux ligneux : arbres, arbustes, conifères, grimpants (notamment la vigne à raisin) C’est le traitement insecticide favori des amateurs de fruitiers, .Selon la région , on l’applique entre le début de mars et la mi-mai… même dès janvier dans les climats vraiment modérés.
Par contre il n’ est pas conseillé pour certaines plantes .
L’application se fait par vaporisation, mélangeant le produit à l’eau selon les proportions indiquées sur le contenant. On l’applique avec un pulvérisateur, sur toute la plante
Amicalement
Jean-Jacques
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Cochenille
Lors d’une promenade dans le verger il est constaté sur certaine branches un enduit duveteux blanc.
Un examen avec le Tomelov montre ce qui était autrefois appelé des poux de plantes.
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On constate la présence d’insectes à différents stades de leur évolution.
On se trouve donc devant une colonie de cochenilles de types farineuses qui sont différentes des cochenilles à carapace et à bouclier.
Les cochenilles étaient appelées autrefois dans le pays les poux de plantes en raison de leur capacité à piquer l’écorce des jeunes branches de pommier.
(On place les cochenilles pendant 48 heures dans de l’eau oxygénée à 12 volumes pour obtenir un bon éclaicissemrent).
Image de rostre vue de profil et vue de face (c’est ce rostre qui permet à la cochenille de perforer l’écorce des jeunes branches).
Notre observation ne fait état que des formes juvéniles et de la forme d’adulte femelle. En effet il n’existe pas ici de formes ailées mais que des formes sans ailes (donc pas de mâle).
Image du mâle trouvée sur le Net (ce n’est pas la même espèce mais cela donne une idée de la différence entre mâle et femelle).
Classification :
Il existe plus de 8000 espèces de cochenilles répertoriées dans le monde ! C'est une famille d'insectes très diversifiée, qui s'est adaptée à une grande variété de plantes hôtes et de climats.
Embranchement Arthropoda
Sous-embr. Hexapoda
Classe Insecta
Sous-classe Pterygota
Infra-classe Neoptera
Super-ordre Endopterygota
Ordre Hemiptera
Sous-ordre Sternorrhyncha
Infra-ordre Coccomorpha
Heslop-Harrison, 1952
Super-famille
Coccoidea
Pour le nom binomial je n’ai pas trouvé l’image correspondant à la cochenille présentée.
Référence
https://fr.wikipedia.org/wiki/Cochenille
http://ephytia.inra.fr/fr/C/19753/Biocontrol-Biologie
sur MikrOscOpia il a déjà était présenté.
https://forum.MikrOscOpia.com/topic/16843-larve-de-cochenille/#comment-66622
https://forum.MikrOscOpia.com/topic/10257-cochenille-hemiptera-coccidae/#comment-35325
Jean-Jacques
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Prélèvement : Cote de la Manche
Lieu : St Honorine (14)
Marée basse dans un trou d’eau
Petite quantité d’algues filamenteuses
On trouve :
Longueur : 2 mm.
L’aspect est celui d’ un Amphipode .
Près du prélèvement il y avait de nombreuses méduses. On pourrait proposer comme nom binomial Hypéria galba, mais Hypéria galba a de grands yeux (c’est un parasite des méduses).
On se limite à Arthropoda
Malacostraca
Amphipoda
Hyperiidea
Jean-jacques
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Plathelminthe
Localisation : cote de la Manche Port en Bessin.
Prélèvement grattage de rocher.
Parmi les petits graviers du prélèvement présence de nombreux individus de type Plathelminthe. :
Le premier contact, inattendu, apparait sous la forme d’une petite boule.
Après quelques minutes d’attente :
La coloration bleue est liée à la non-utilisation de la balance des blancs :
Essai de l’utilisation du contraste de phase :
Précision sur les quatre taches noires :
Selon Coastal plankton on doit se trouver devant le subphylum Rhabditophora
Les Rhabditophora, ou Rhabditophores en français, sont un sous-embranchement de Plathelminthes (vers plats), libres ou parasites.
Je n'ai pas pu aller plus loin.
https://fr.wikipedia.org/wiki/Planaire_(zoologie)
Jean-Jacques
Araignée : hypothèse Anyphaena
in Insectes. et autres bestioles
Posted
Sur la face ventrale de l’abdomen on met en évidence la zone filière:
Sur la partie haute de l’abdomen la zone génitale est bien mise en évidence.
Personnellement je n’ai aucune expérience des araignées. Je vous propose le genre Anyphaena avec une extrême réserve
Jean-Jacques