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Jean-Marc Babalian

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Posts posted by Jean-Marc Babalian

  1. Bonjour,

     

    Voilà mon petit labo. J' ai evidemment tenu à ranger tout avant de vous le présenter. Mise à part que pour une fois c' est bien ranger selon ma compagne, il n' y a rien d' extraordinaire, sinon il aurait fallu que je prenne une photo de chaque tiroir ou placard.

    Ha si ! , vous pourrez remarquer le joystick et le volant pour poursuivre plus facilement les protozoaires à l' ecran. Ceux qui auront pensé que c' est pour jouer à NFS underground II, ne sont que des médisants :lol: !

     

     

    post-88-1156697781_thumb.jpg

     

    post-88-1156697781_thumb.jpg

     

     

     

    A+

    J-M

  2. Bonjour Christian,

     

    Au niveau solvant, je pense que le toluene (un seul radical CH3- sur un noyau benzenique) est un peu meilleur que le xylene, qui lui est plus stable "electroniquement", il est moins suceptible de provoquer la fabrication de radicaux libre (dangereux). Le meilleur en parallele est le benzene, evidemment cancerigene reconnu !

     

    A+

    J-M

  3. Une Pleurosigma Angulatum vivante.

    Trouvée dans l' estuaire de Saint-Nazaire, dans une petite mare à marée basse, apres l' essorage d' algues filamenteuses.

    Dimension 200 µm

     

    post-88-1140895684_thumb.jpg

     

    Coolpix 995

    Periplan 10/20

    Plan Nikon 40/0,70 DIC

     

    A+

    J-M

  4. Bonsoir Olivier,

     

    Il faut prendre les rotiferes au maxi au 1/500e pour commencer à bien figer l' image, ce n' est certainement pas evident avec ta camera. Et l' eclairage necessaire est important flasher ! Sinon tu as bien mis au point les cils. :) Les sorties trino devrait sortir environ 75-85% de la lumiere totale pour que la prise photo beneficie correctement de l' eclairage du statif.

     

    A+

    J-M

  5. Bonjour,

     

    J' ai réalisé un essai avec un MHEC (methyl-hydroxy-ethylcellulose) de 20 centipoises à 2% (c' est hachement compliqué :D , ca en jete ! ) et malgré que cela ne soit pas tres visqueux, cela ralenti considerablement les rotiferes et paramecies, et cela ne les tue pas ... tout de suite. j' ai juste incorporé un peu de poudre dans le bouillon sur la lamelle et melangé ave une aiguille. Fait etrange, les paramecie dans leur effort pour se mouvoir perdent leurs cils au fur et à mesure de leur nage :lol:

     

    A+

    J-M

  6. Bonjour,

     

    Un peu de chimie organique !

    Donc il y a de forte chance que cela soit un ether cellulosique (retenteur d' eau), dérivé d' un methyl cellulose. Ceux sont de longues chaines de polymeres de cellulose (hydrophobe) sur lesquelles sont greffés de chaines hydroxymethyl, hydroxyethyl ou hydroxypropyl (hydrophile). Suivant la longueur des chaines et le nombres de substituants gréffés, cela modifie la viscosité et le pouvoir retenteur. Ces produits se retrouvent partout, dans les colles, les produits d' entretiens, les produits d' hygiene ou cosmetique (gel), et jusqu' à dans la nourritures, les sauces industrielles. ils augmentent la viscosité, et améliorent le liant et le collant.

    Je pourrait faire quelques essais, j' en dispose d' un petit peu chez moi. (mais il y a differents grades d' epaississement et de viscosité)

    Le prix est cher, mais pas autant que vos produits, les marges doivent être bonnes !

    A+

    J-M

  7. Bonsoir,

     

    chez moi, c' est la pleine saison des ciliés dans mes petits aquarium, et en particulier de mes favoris, les paramecies, de quoi les prendre de toutes les couleurs.

     

    Coolpix 995 reglé à l' infini

    pose 1/500eme

     

    NPL FLuotar 20/0,55 ICT

    post-88-1136757599_thumb.jpg

     

    Plan 40/0,70 DIC pour les suivantes

    post-88-1136757743_thumb.jpg

     

    Une petite vue sur le peristone

    post-88-1136757910_thumb.jpg

     

    Et une petite derniere

    post-88-1136757950_thumb.jpg

     

     

    Encore une fois, j' en ai plein :-)

    NPL Fluotar 25/0,55 ICT

    Coolpix 995 Flash 1/1000e

    post-88-1195229855.jpg

     

     

     

    A+

    J-M

  8. Pierre, meme avec de l' electrique, c' estc possible, il suffit d' avoir la bonne resistance !

     

    Bon juste pour montrer que je ne dis pas n' importe quoi :lol: :

    une aiguille tirée de mon stock rapidement : elle fait environ 15 µm de diametre, (1 graduation = 4µm)

    Plan Nikon DIC 40/0,70

    la photo est un peu flou, car je n' ai pas utilisé de lamelle C.O

    A+

    J-M

    post-88-1130527210_thumb.jpg

  9. Bonsoir,

     

    Il y a quelques années, j' arrivais encore à etirer les bouts des pipettes Pasteur pour en faire des aiguilles creuses de 5 à 10 µm de diametre simplement à la flamme d' un bec Bunsen :D . Il faut simplement que le geste soit regulier (ce qui n' est pas le cas d' une masse)

    A+

    J-M

  10. Bonjour Christian,

     

    Comme les experts sont peut-être en vacances, je vais te repondre avec les quelques techniques que j' utilise , surtout pour les recoltes.

    Je cherche principalement là ou il y a le plus de vie, cad au niveau des rochers.

    Là je fais environ 2 -3 choses :

    Je recupere l' ecume quand il y en a, je gratte quelques moules ou autres mollusques, je prends quelques algues, genre laminaires ou autres, et enfin je jete un filet à planctons plusieurs fois à l' eau que je ramene et je vide le petit tube dans un flacon.

    A priori, tu recupereras des diatomées, des petites meduses, et des larves de crustacées.

    Donc tu vois je suis sûr que je ne t' ai pas appris grand chose.

     

    Pour la conservation, si les recipients restent ouvert , sans trop d' evaporation tu peux les tenir une semaine- 10 j sans soucis.

    A+

    J-M

  11. Bonsoir,

     

    Autant j' apprecie et j' encourage la rigueur d' Olivier, autant je prefere les "egarements" de Christian .

    De toute maniere, a moins de se lancer dans une etude complete avec prise de note, 10-20 photos, avec plusieurs techniques d' eclairage que tout le monde n' a pas, avec peut-etre des colorations, et bien je suis sûr qu' il manquera quelque chose ! :lol:

    Mais c' est cela qui est bien !

    A+

    JM

  12. Bonsoir,

     

    Voila la suite pour moi. J' ai laissé tombé le DIC avec un condo en fond noir, pour un DIC plus conventionnel et un CP egalement.

    Meme condition d' observation.

    Le DIC est avec le planapo 100/1,40

    Le CP avec un Zeiss neofluar ph3

    Je trouve que les 2 images se complete bien, avecun avantage pour le CP

    1ere image :DIC

    post-12-1120252219_thumb.jpg

  13. Bonsoir,

     

    Voulant tester sur du materiel "vivant" ou presque, j' ai fait quelques tentative sur les cellules de la joue.

    Suivant la technique precedemment decrite, la MAP sur l' interieur de la cellule ou du noyau est difficile et peu exploitable à mon gout. L' image renvoie de meilleurs information sur la surface de cellules. Donc je n' ai pas photographié de noyau, mais la surface "striée ??" du cytoplasme, et des procaryotes . Les bactéries semblent revéler quelques détails non reconnaissable, mais est ce reellement à elles, et est ce reellememnt des détails ??

    Condo fond noir à immersion , DIC planapo 100/1,40

    Coolpix 995

    post-12-1120163528_thumb.jpg

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