Dominique. Posté(e) le 23 octobre 2023 Signaler Partager Posté(e) le 23 octobre 2023 Lignification Topinambour Tige évolution au cours de l’année Le topinambour ( Helianthus tuberosus) est une plante de la famille des asteraceae bien connue Ces fleurs sont décoratives et ses tubercules sont comestibles et toujours présents sur les étals des marchés Sa croissance est rapide au printemps la tige est très souple -Cette tige depasse les 2 métres en automne et devient particuliement rigide -Comment expliquer cette rigidification ? Coupe faite le 12 Mai - (la tige atteint les 15 cm de haut ) A--EpidermeB –Parenchyme corticalC –Cylindre centralD –PhloèmeE --CambiumF –XylèmeG –Rayons médullairesH –Parenchyme medullaire Coupe faite le 16 juinZone corticaleA—Epiderme sur lequel sont apparus des trichomes (A’)B –Parenchyme cortical : son épaisseur a déjà beaucoup diminué.C –Cylindre central. Il se situe de plus en plus vers la périphérie au dépend de la zone corticale Axe vasculaireD –PhloèmeE –Cambium qui assure la croissance en centrifuge du Phloème et en centripète du Xylème Zone médullaireF –Rayons médullairesG –Parenchyme médullaire Coupe faite le 6 septembreA--EpidermeB –Parenchyme cortical : Axe vasculaireC –Phloème qui se lignifieD –CambiumE --XylèmeF –On note la disparition progressive des rayons médullaires cellulosiques qui sont remplacés par l’apparition de faisceaux collatéraux lignifiés ce qui augmente la rigidité de la tige .On noter aussi le début de lignification des rayons medullaires qui restent ( couleur rosé )F –XylèmeZone médullaireG –Parenchyme médullaire qui tend à disparaitre dans son centre Coupe faite le 5 Octobre (la tige atteint 1,90m) Zone corticaleA—Epiderme Il s’est épaissi.B –Parenchyme cortical : Il a quasiment disparu.C –Cylindre central. Touche désormais l’écorce. Axe vasculaireD –Phloème .Il est totalement lignifié.E –Cambium Il s’est aussi lignifié (le diamètre de la tige est désormais fixé et cette lignification augmente la résistance de cette tige.) Zone médullaireF –On note la disparition des rayons médullaires cellulosiques qui sont remplacés par des faisceaux collatéraux lignifiés ). ConclusionLa rigidité de la tige est liée au développement progressif de la lignification Ce processus de lignification débute très tôt dans l’année avec les vaisseaux de Xylème et s’ étend au Phloème puis aux cambiums .Par ailleurs en même temps que le parenchyme cortical se raréfiait sont apparus au cours de développement des faisceaux collatéraux qui se sont aussi lignifiés ( ces faisceaux collatéraux se sont développés au dépend des rayons médullaires cellulosiques qui sont de moindre résistance ).La lignification est donc un processus évolutif tout au long du cycle de développement de la tige du topinambour. Definition de WikipediaLa lignine (du latin lignum qui signifie bois) est une biomolécule, plus précisément une famille de macromolécules polyphénoliques, qui est un des principaux composants du bois avec la cellulose et les hémicelluloses. Ce biopolymère est présent principalement dans les plantes vasculaires et dans quelques algues rouges coralligènes, ce qui suggère une convergence évolutive de la biosynthèse des lignines entre ces algues et les trachéophytes. Ses principales fonctions sont de conférer de la rigidité et de la résistance mécanique aux parois cellulaires, ainsi que d'apporter une imperméabilité à l'eau et une résistance à la décomposition. ****************************Remarque technique sur cette observation :Le protocole de coloration a toujours été le même mais les résultats ne sont pas stables Pour les 4 préparations on a procédé de la manière suivante et pourtant les colorations obtenues sont vraiment différentes. Coupe autour de 120 µm Bain dans un mélange alcool/ acide acétique / formol 10 minutes ‘(AFA). Rinçage puis Eau de Javel du commerce durée jusqu’ au blanchiment des échantillons.Rinçage coloration avec un mélange (solution de safranine 3 gtt + eau 6 gtt + Solution d’Acridine 2 gtt ) 3 minutesRinçage puis bain dans une solution d’Alun de Potasse 7 % 3 minutesRinçage coloration avec le mélange (Astra Bleu 2 gtt + 6 gtt d’eau + Bleu Alcian 2 gtt ) 2 minutesDéshydratation avec un mélange Alcool 95 + Fotonal 1% (pour éviter les bulles d’air)Xylène quelques gouttes sur la lame (pour éviter les bulles d’air)Montage Euparal Explication possible un manque de rigueur dans les temps de manipulation des échantillons lors des différentes étapes ( et peut-être 1 goutte de plus ou de moins par mélange - mais la manipulation de la pipette Pasteur ‘n’est pas aussi évidente qu’ il y paraît ) . Dominique. Lien vers le commentaire Partager sur d’autres sites More sharing options...
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