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Jean-Luc Bethmont (Picroformol)

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Tout ce qui a été posté par Jean-Luc Bethmont (Picroformol)

  1. Bonjour, Merci pour vos conseils, j'ai aussi retrouvé un document de Jean Marc " Modifier l’éclairage classique d’un microscope en éclairage LED". Je vais regarder aussi comment commander la LED avec les ports GPIO du Raspberry et comment integrer cela avec le "DC-DC step down de JMP" . Comme je n'y connais pas grand chose en électronique cela va me demander un certain temps.... Je reviendrais vers vous pour d' autres conseils. Amicalement, JL
  2. Bonjour à tous, D' abord mes excuses Jean-Marie ! JMP j' ai relu ton article que j' avais oublié: il est toujours bon de s' inspirer de l' expérience des autres... Voici les photos pour la place de la lampe dans mon micro: cette première photo montre la lampe dans son boitier retirée du statif (lampe 6v 30W) la deuxième vue de profil il y a 12 mm de dégagement: la troisième l' arrière du statif ou vient s' enclencher le boitier avec les emplacements des deux grosses fiches qui maintiennent le boitier: Est ce qu'une LED de ce type peut convenir https://www.e44.com/composants/composants-actifs/optoelectronique/led/leds-cms/led-puissance-3w-star-blanc-ambiant-750ma-3300k-3.4...4v-LED3WCMS-WW.html et comment l' alimentée pour avoir un courant continu filtré avec une tension commandée via les ports GPIO du Raspberry ? P.S. Concernant ChatGPT: il me rend de grands services pour l'écriture de code avec ses limites bien sûr ! Pour Neat Image il m'a cité une bibliothèque Python qui ferait aussi bien que neat Image c'est "bm3d" je ne l'ai pas encore testée. Amicalement, JL
  3. Bonjour Dominique, J'ai lu ton sujet, j' avais l' impression de lire un roman policer. Tu mènes une véritable enquête... Amicalement, JL
  4. Bonsoir Jean-Marc, Je te remercie pour ton intérêt et je pense quand réunissant l' informatique, les micro ordi (Arduino,Raspberry Pi etc...) et nos microscopes ont pourrait faire pas mal de projets intéressants. Concernant le zooplancton il n'y a pas de problème, la détection doit aussi fonctionner il suffit d' ajuster le paramètre de seuil de la détection. Dans mon exemple j' utilise l' aire calculée par le contour de l' organisme en mouvement quelque soit sa vitesse et sa forme. La bibliothèque OpenCV est riche, on peut détecter des carrés ,des ronds, des structures particulières (coins) sans compter sur l' utilisation de modèles entraînés (deep learning) etc... Concernant le scintillement j' avais pensé aux LEDs mais je n'ai pas les connaissances nécessaires pour faire un tel montage (remplacer la lampe halogène du micro par une LED) et effectivement l' idée de suralimenter la LED est très intéressante. La RaspberryPi possède des broches GPIO permettant de piloter pas mal de choses. Le programme pourrait avoir la séquence suivante: détection, suralimentation LED, prise de vue, arrêt de la suralimentation de la LED. Si tu peux faire un schéma de montage avec alimentation de la LED, les caractéristiques des pièces à commander, je suis preneur... Enfin on peut gagner en luminosité en faisant un binning 2x2 ou 4x4 par addition (regroupement des valeurs des pixels) ce qui multiplie par 4 ou 16 la luminosité (au détriment du nombre de pixel constituant l' image. Image neat (que je n' utilise pas encore) améliore le bruit et préserve les détails. Je vais demander à chatGPT comment il travail afin d' essayer de l' ajouter au programme (c'est peut-être ambitieux !) Amicalement, JL
  5. Suite...... Les photos sont prises à l' objectif x40 et recadrées. La vitesse de prise de vue va du 1/2000 au 1/1000. On arrive à obtenir des détails intéressants ! Il y a pas mal de déchets dans les photos, il faut faire du tri après. Comme le temps de pose est très court je suis obligé d' augmenter le gain ce qui produit du bruit. l' autre problème vient du courant alternatif qui alimente l' éclairage halogène (50 Hz) ce qui fait qu'il y a du "scintillement" (flickering) en desous d' un temps d' expo inférieur au 1/100. Je dois refléchir à ces 2 points...... Mais c'est quand même cool de lancer le programme et d' aller boire un café en attendant Cordialement, JL
  6. Bonjour, Pour rebondir sur le sujet du ralentissement des ciliés et des remarques de Jean-Marc qui utilise un flash incorporé à l' éclairage du microscope je me suis demandé si l' on pouvait tiré le portrait de ces "bolides" avec une caméra basique. J' utilise maintenant un capteur Sony IMX477 pilotable entièrement via la bibliothèque Picamera2 (en python) avec un Raspberry Pi4: https://forum.mikroscopia.com/topic/19143-camera-sony-et-raspberry/#comment-79351 Donc j' ai développé un programme qui permet de capturer des images avec une vitesse d' obturation de 100 à 1000 µ secondes (soit 1/10000 à 1/1000 sec). Pour pouvoir déclencher automatiquement la prise de vue j' ai choisi de détecter les objets (ciliés) en mouvement dans le champ de capture sur la base de la soustraction du fond (background subtractor). Je met sur la platine la lame avec l' échantillon et la lamelle, je fais la mise au point et je démarre le programme. Une première photo du fond est capturée puis le programme recherche à chaque capture combien de pixels ont changés. Le programme trace le contour des objets en mouvement , si l' objet en mouvement à une surface dont la valeur est supérieure à une limite alors la prise de vue est déclenchée et la photo est enregistrée puis le programme attend un nouvel objet en mouvement etc... Ci dessous l' écran de contrôle de détection du mouvement: Pour avoir plus de chance de détecter un cilié j' utilise un morceau de lamelle. Voici quelques ciliés détectés:
  7. Bonjour Dominique, Ton article est, encore une fois, très interessant (mes parents cultivaient du blé en autre) effectivement les rendements ont fortement augmentés depuis 1950. Je voulais juste ajouter que la récolte dépend de nombreux facteurs en dehors d'un talle de bonne qualité comme les conditions météo avant la récolte (blé couché qui ne peut être moissonné) épis et grains chétifs ,moisissure etc... Amicalement, JL
  8. Bonjour, J' ai trouvé ce site sur les cochenilles: https://passion-entomologie.fr/cochenilles-vecteurs-de-virus/ Cordialement, JL
  9. Bonjour Dominique, Tu nous racontes là une belle histoire (naturelle). A quoi correspond la zone verdâtre au sommet de la tête ? Cordialement, JL
  10. Merci pour ta réponse mais je m' aperçois que la durée de conservation est assez réduite ! Donc profitons de tes images ...
  11. Bonjour Jean Marie, Quel beau bestiaire tu nous offres là ! J' ai une question: il m' arrive d' aller de temps à autre au bord de mer, je fais des prélèvements que je ramène à la maison pour observation mais ils ne se conserve pas. Quel est le moyen le plus simple pour améliorer cette conservation afin d' avoir le temps de poursuivre les observations et si il faut des produits spécifiques où se les procurer. Merci d' avance, JL
  12. Bonjour Dominique, Une fois de plus on voit comment la "nature" est ingénieuse ! Comment as -tu réalisé cette coupe ? B.c. JL
  13. Bonjour Dominique, Encore un sujet bien documenté et qui ne manque pas de piquant :) cordialement, JL P.S. je me demande si l' ortie était cultivée avec les moyens agronomiques actuels sa culture resterait "écologique"
  14. Bonjour Dominique, Encore un beau sujet ! Est ce qu' il y a des éléments figurés qui circulent dans ce système ? Cordialement, JL
  15. Bonjour Dominique, Encore un superbe travail. Concernant les produits retrouvés dans l' encre: Je pense que le plomb et le cadmium sont des polluants accumulés par l'organisme (je ne sais pas à Quelle concentration ils sont ?) Cordialement, JL
  16. Bonjour Dominique, Concernant la dureté de la chitine du rostre du charançon j' ai trouvé cet article ou on donne une explication (il vaut mieux que son rostre soit solide car il n' en a qu' un seul pour toute sa vie :) ) : https://asknature.org/?s=weevil&page=0&is_v=1#video et une photo avec une coupe du rostre similaire a ton schéma: Cordialement, JL
  17. Bonjour Dominique, Sujet encore bien documenté qui a dû te demander beaucoup de travail. Je suis toujours admiratif de la qualité de tes photos ! Cordialement, JL
  18. Bonjour, Effectivement je me souviens d' un documentaire sur le sujet où il était question d' études qui mettaient en évidence le fait que des personnes qui avaient côtoyé des animaux dans leur enfance étaient moins sujet aux allergies et étaient plus "robustes" vis à vis des infections. Cordialement, JL
  19. Encore un article enrichissant. Et pas une coquille dans le texte........ Cordialement, JL
  20. Je ne sais pas pourquoi mais on ne peut pas répondre à ce sujet et j' ai mis des tailles de photos trop petites donc je fais une suite avec la bonne photo: On voit mieux les détails. Le frustule mesure environ 60 µm de diamètre et 20 µm d 'épaisseur. Cordialement, JL
  21. Bonjour, Présente en assez grande quantité dans un échantillon d' eau douce (mare dans le Val d' Oise) la diatomée Melosira forme des filaments: Deux autres vues x60 et x100: Au niveau des frustules vides ont aperçoit des "dents" à droite permettant l' amarrage de chaque frustule et les stries qui ornementent chaque thèque: enfin les auxospores qui correspondent à des oeufs fécondés (reproduction sexuée) Sur le site suivant une expication des modes de reproduction: https://sites.google.com/site/sheobiogt/organism-study/life-cycle Cordialement, JL
  22. Merci pour ces précisions
  23. Bonjour Dominique, Encore une belle présentation. J' ignorais qu' il pouvait y avoir des hépatocytes avec des noyaux polyploïdes; est-ce qu'il y en a dans les noyaux de cellule d' autres organes et celà a-t-il un rapport avec la cancérogénèse ? Amicalement, JL
  24. Bonsoir Dominique, Encore un sujet enrichissant. Je suis toujours stupéfait par les capacités d' adaptation du vivant via les mutations . Amicalement, JL
  25. Bonjour Eric, Question délicate ! Il y a quelques années j' ai acheté une caméra Optixcam Summit serie 5mp qui était donnée compatible mac le modèle équivalent est dispo ici: https://www.microscope.com/microscope-cameras/optixcam-summit-sk2-5-2x-5-0mp-pc-mac-compatible-digital-microscope-camera.html En fait la caméra est compatible mac mais le logiciel de traitement de l' image ( mesure, échelle, annotation) ne l' est pas. j' ai donc acheté d' occasion un pc sous windows XP SP3 que je laisse à côté du microscope. Donc il faut faire attention aux compatibilités indiquées D' autre part le fait d' utiliser un port USB2 entre la caméra et l' ordinateur limite, pour la vidéo, le nombre d' image par seconde; je plafonne à environ 15 image/sec à une résolution de 1280x960 ce qui est insuffisant pour les organismes rapides. Par exemple la caméra ci dessous est compatible mac et pc y compris pour le logiciel et en usb 3 je ne connais pas le prix c' est un modèle plutot pro. https://www.microscope.com/microscope-cameras/advanced-professional/gryphax-subra-2-0-mp-hd-cmos-color-digital-microscope-camera.html Sinon il y a des caméras autonomes qui n' ont pas besoin d' ordi (stand alone) qui enregistrent sur carte sd et la visu se fait sur écran via cable hdmi comme le modèle ci dessous: https://www.microscope.com/omano-ocs-hdmi-1080pu-2-0mp-hdmi-usb2-0-digital-microscope-camera.html Enfin je fais tourner quelques logiciels spécifiques ( iris,picolay) avec " wine" sur le mac. Cordialement, JL
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