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Jean-Marc Babalian

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Tout ce qui a été posté par Jean-Marc Babalian

  1. Bonjour, Merci pour ce sujet toujours très intéressant sur le plancton marin. J'ai souvent réalisé des récoltes directement en plongée dans les eaux chaudes des caraïbes, ou en méditerranée, et le plancton doit être observés dans les 2-3 heures maximum, avec déjà beaucoup de perte au niveau des copépodes, et ceci même quand je mettais au frigo. Je confirme qu'il faut enlever toutes matières organiques pour éviter un pourrissement de l'eau. Avec une exception, quand je récolte en Atlantique, quelques algues vertes très fines avec le bocal laissé à la lumière indirecte, permet de conserver l'eau (sans odeur) beaucoup plus longtemps. Cependant il y a quand même énormément de mortalité. A+ JM
  2. Jean-Marc Babalian

    Taenia Saginata

    Excellent sujet, Merci Dominique, Moi qui aime bien les viandes peu cuites ! JM
  3. Bonjour Dominique Tryphon, Sujet intéressant, car les microscopes "numériques" avec écran, prennent de plus en plus d'importance dans le domaine du contrôle de routine. Ce qui n'était que des jouets ou des microscopes assez peu performants il y a encore quelques années, devient du matériel de qualité à des prix très intéressants. Il y a de quoi faire en études comparatives sur ce matériel, presque plus que sur les microscopes classiques. Ils remplacent avantageusement dans certains domaines la loupe binoculaire stéréoscopique, avec toute fois l'inconvénient de ne pas rendre l'effet stéréoscopique comme une loupe bino. Mais peut-être que cela sera possible, s'il y a un intérêt technique et financier. Les capteurs de qualité se sont énormément démocratisés, mais une pièce essentiel reste l'optique, car il y a toujours un objectif qui donne une image sur le capteur, et il ne faut pas oublier la stabilité de l'ensemble qui est très importante. Inutile d'avoir le meilleur matériel d'observation si quand on veut mettre au point, les différentes flexion ralentissent le travail. A+ JM
  4. Jean-Marc Babalian

    Diploneis smithii

    Diatomée marine et eaux saumâtres, fond noir X1000

    © @Microscopie_44

  5. Jean-Marc Babalian

    cymbella mexicana

    Diatomée marine prise en fond noir à x1000

    © microscopie_44

  6. Jean-Marc Babalian

    Cymbella mexicana

    Diatomée marine prise en DIC à x1000

    © Microscopie_44

  7. Merci :) Pour les lames 1/4 d'onde, j'ai eu 2 appro. 1 sur Ebay, un achat de plusieurs lames en verre, 1/4, lambda, polriseurs, provenance Zeiss Iena, la personne qui vendait ne savait pas ce que c'était, j'ai eu cela pour une bouchée de pain. 1 lot sur Edmund optical, de filtres polymères avec des polariseurs polymères également, c'était indiqué pour éducation scolaire, mais cela marche très bien, sans variation de couleurs dans les films. A+ JM
  8. Hello, Pour faire un peu plus pro, et aussi beaucoup pour le plaisir, j'ai refais le module épiscopique de l'Aristoplan grâce à l'imprimante 3D. J'ai gagné un poil de précision par rapport à celui que j'avais réalisé en bois. Le gros avantage quand même, c'est que l'on peut refaire le modèle autant de fois que l'on veut, après avoir modélisé les pièces. A+ JM
  9. Je n'avais pas fait attention à cela, mais Sciroccoblow à certainement raison ! JM
  10. Il y a peut-être un tour maximum du mouvement rapide (comme sur les Leitz). Donc il faut redémonter, faire tourner la grosse molette comme ci on voulait déscendre la platine (mais bloc platine enlevé) puis remonter le bloc et refaire un essai de monte et baisse pour voir si on récupère la bonne course. Bon courage JM
  11. En complément du très bon article de Jérôme, et des commentaires de Tryphon, il faut impérativement le boitier. Sinon l'éclairage avec un autre système ne sera pas optimal et on perdra au mieux beaucoup de lumière. Une autre adaptation, avec une LED très puissante, dans un boitier Leitz un peu plus récent : Et si Sirrocoblow n'a pas de lampe, en voici un (à vérifier que c'est bon ) : https://www.ebay.com/itm/232484037171 Il faut chercher à "Leitz lamphouse", "leitz lamp housing" par exemple Allemand : Leitz lampenhaus JM
  12. Bonsoir Ou adapter un reflex avec un live view Les logiciels fournis doivent tourner aussi sur Mac A+ JM
  13. Entièrement d'accord, ma réponse ne voulait pas laisser sous entendre que tout était dit ou fait, et il y a même encore beaucoup à faire ou à trouver. A+ JM
  14. Dudulle, Il y a des 10aine de photos et sujets consacrés à la résolution des objectifs, il suffit de chercher un peu ! Un microscope conventionnel résoudra sans problème 300nm. Le micron est facilement résolu avec un objectif 40x Les meilleurs microscopes avec des éclairages conventionnels en lumière visible résolvent sous 200 nm JM
  15. Rien qu’avec les mouvements de la platine du microscope, on peut interpréter ce qui est net et donc savoir ce qui est en bosse ou en creux , mais c’est moins facile ! A+ JM
  16. Le problème avec le DIC c'est que l'interprétation d'un image est ambigue et ne reflète pas forcément la réalité. Le DIC n'est qu'une impression de fausse ombre qui permet de réhausser les images manquants de contraste ou de réfringence. La lumière ne vient pas plus d'un coté que de l'autre. La confirmation se fera plutôt grâce à un MEB par exemple. A+
  17. Bonjour, Le "H" en bosse ou en creux n'est juste qu'une interprétation du cerveaux par rapport à l'orientation de l'image. C'est identique à voir les cratères de la lune en bosse. Pour ma part je vois tous les "H" en bosse. Cela dépend des gens et de comment on se concentre sur la photo. A+ JM
  18. Bonjour pierre, Je suis d’avis de Claude La dernière est sympa mais manque un peu de lumière La 3 donne une double rangée de perles ce qui peut être mal interprété A+ JM
  19. Je trouve cela cher pour un microtome à main et pour des coupes à 25 microns . Il n’y a pas une grande différence avec un modèle à platine ronde en verre ou en acier inox JM
  20. Bonjour Pierre, Je n'en ai jamais vu ! Merci pour la mise à jour des classifications. JM
  21. Bonjour à tous, Je poursuis le fil de ce message sur Navicula oblonga, comme diatomée test, commencé par Pierre. Comme je l'avais indiqué au-dessus, NO est une diatomée assez bien contrastée qui se révèle bien plus facile que A.pellucida et Pinnularia major ou nobilis. Elle reste un bon test pour un microscope équipé avec un bon objectif 100/1,30 et un condenseur à immersion. Là, comme souvent sur les diatomées tests, un condenseur avec une ON < 1,20 est nécessaire. L'utilisation de la polarisation se montre également d'un avantage non négligeable. Le contraste interférentiel ne permet pas de résoudre cette diatomée. La diatomée fait environ 140µm, et la période des stries est d'environ 250-260nm, soit environ 38-40str/10µm D'autres tests à venir... JM
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