Dominique.

Purin d’orties Le purin d’ orties a la cote chez les jardiniers et une conversation sur le jardinage va quasi obligatoirement aboutir à ce sujet . Recette de fabrication 1 kilo d’orties pour 10 litres d’eau Commencez par hacher le produit de votre récolte Placez les orties hachées dans un bac en plastique, Couvrir le bac et brasser tous les deux jours le mélange. La fermentation de votre purin d’orties dure en général 10 à 15 jours Pour finir, filtrez la préparation. Conservez le liquide dans des récipients plastiques, dans un endroit sombre et frais. La durée de conservation de votre purin d’orties est d’environ six mois dans ces conditions. On utilise cette solution mère diluée entre 5 et 10 % comme prévention des attaques des pucerons en pulvérisation Mais que vient faire un article sur le jardin dans MikrOscOpia – ? Simplement suite à une constatation que je vous fais partager Vue de la préparation au 15 éme jour : Ce qui frappe est cette couche d’un beau blanc ( qui fait un certain contraste avec l’ odeur qui se dégage du bac ) Quelle est sa nature ?. L’aspect est celui d’un feutrage de mycélium : Le ph du milieu est à 6 . L’ examen en episcopie de la zone aérienne du feutrage ( la qualité du cliché est modeste mais parlante): On se trouve devant des conidiospores qui correspondent à ceux de Geotricum . Cette moisissure a deux moyens pour se multiplier. Celle qui est visible sur la photo ci-dessus où l’on voit les conidies qui se développent en surface Sur la photo ci-dessous on est dans l’ épaisseur du purin. Donc : Fabrication aérienne de longs rubans de Conidies qui sont emportés par le vent et Fabrication d’ Arthrospores cylindriques par fragmentation des hyphes baignant dans le milieu Le frottis de purin d’ orties réalisé montre une colonisation bactérienne considérable , colonisation faite de Coccis et de Bacilles . Résultat d’une coloration de Gram : il y a des bactéries Gram positifs bleus et quelques Gram négatifs roses ( violet de gentiane - fuchsine). (on ne les voit pas bien le rose sur la photo mais il y en a ). Il est refait une préparation colorée au Bleu coton : Il est mis en évidence un mélange de levures et d’ arthrospores du genre Geotrichum (.le bleu coton ne colore pas les levures ). Les levures sont de forme cylindrique ,plus ou moins allongées comme Saccharomyces boulardi ou Saccharomyces cerevisiae et d' autres Saccharomyces ……. Image d’une division de levure par bourgeonnement .Cette préparation n’est pas colorée -( j’ ai utilisé une lame quart onde placée sur la ligne de lumiére ). L’examen du milieu semble indiquer la présence d’ autres fongi .En effet l’examen des lames met en évidence les hyphes et le bourgeonnement d’une autre moisissure : Il y a quelques années le Geotrichum album – a déjà été rencontré lors de la présentation du camembert : La couleur blanche du camembert est liée au developpemet de geotrichum . Le goût du camembert est lié à la présence de Penicillium camemberti. https://forum.MikrOscOpia.com/topic/11873-geotricum-et-camembert/#comment-40582 Le Geotrichum est une moisissure cosmopolite sol, air ,céréales ,papier ,textile ,fruits ,jus de fruits ,produits laitiers ,tube digestif de l’homme et des animaux. Conclusion : Pour le simple plaisir et pour conclure cette observation on pourrait créer un lien entre la création du camembert et les orties . Dans les fermes autrefois on préparait pour les canards un mélange de broyat d’ orties et de farine pour les engraisser plus vite Comme la séparation entre la laiterie et le reste des bâtiments n’ avait rien à voir avec les fermes d’ aujourd’hui les contaminations d’un produit par un autre était le lot quotidien d’où le Geotrichum dans les fromages ( maintenant on l’ ensemence lors de la préparation des fromages dans le laiteries ) L ’abbé Charles-Jean Bonvoust aurait transmis à Marie Harel la recette en échange de son aide pour fuir les républicains… Marie Harel produisait alors des fromages frais classiques l’ abbé lui conseilla de procéder à un égouttage, un salage et un séchage sur planches de bois, comme il était alors de coutume en Brie. En quelques jours, le fromage se serait recouvert de la jolie croûte blanche due à la prolifération du Geotrichum .. ************************************************************ Pour les jardiniers Fréquence d'utilisation du purin d'orties La fréquence d'utilisation du purin d'orties dépend de plusieurs facteurs, tels que le type de plante, l'objectif de l'application et la concentration du purin. Recommandations générales En général, on recommande d'utiliser le purin d'orties : En fertilisation: Dilué dans l'eau, il peut être appliqué une fois par semaine ou tous les 15 jours pendant la période de croissance des plantes. En traitement contre les maladies et les ravageurs: Pulvérisé sur le feuillage, il peut être appliqué une à deux fois par semaine, en fonction de la pression des nuisibles. Remarques importantes Respectez les dosages: Il est important de diluer le purin d'orties dans l'eau selon les recommandations pour éviter de brûler les plantes. Adaptez la fréquence: En cas de fortes pluies, l'application du purin d'orties peut être moins fréquente, car le sol est déjà suffisamment humide. Composition chimique du purin d'orties Le purin d'orties est une préparation riche en éléments nutritifs et en composés bénéfiques pour les plantes. Sa composition chimique varie en fonction de plusieurs facteurs, tels que l'espèce d'ortie utilisée, les conditions de culture et le processus de fermentation. Principaux éléments constitutifs Macro-éléments: Azote (N): Elément essentiel à la croissance des plantes, il favorise le développement des feuilles et des tiges. Potassium (K): Renforce la résistance des plantes aux maladies et améliore la qualité des fruits et des fleurs. Phosphore (P): Stimule la croissance des racines et la floraison. Calcium (Ca): Contribue à la solidité des structures cellulaires et à la résistance aux stress. Magnésium (Mg): Active la photosynthèse et joue un rôle important dans l'absorption des nutriments. Oligo-éléments: Silice: Renforce les parois cellulaires et protège les plantes des maladies fongiques. Fer (Fe): Favorise la synthèse de la chlorophylle et participe à la respiration des plantes. Autres composés: Acides aminés: Constituants des protéines, ils sont essentiels à la croissance et au développement des plantes. Vitamines: Le purin d'orties est riche en vitamines B, C et E, qui jouent un rôle important dans le métabolisme des plantes. Composés phénoliques: Aux propriétés antioxydantes et antifongiques, ils contribuent à la protection des plantes contre les agressions extérieures. Acides organiques: Stimulent la vie microbienne du sol et améliorent la fertilité du sol. Références 1 https://fr.wikipedia.org/wiki/Schizosaccharomyces_pombe 2 https://fr.wikipedia.org/wiki/Saccharomyces_cerevisiae Dominique. .

Hanneton (Melolontha melolontha). ou Cétoine dorée (Cetonia aurata.) Cet article ne va pas utiliser le microscope mais le macroscope /- episcopie . Si vous écrivez « Ver Blanc des jardins » sur votre moteur de recherche vont apparaitre un grand nombre d’ articles dont de nombreux sites marchands ;Ces sites vont vous offrir le produit miracle pour vous débarrasser de ce gros ver blancs « source de nombreux malheurs pour vos agricultures » car ce ver est présenté comme étant la larve du hanneton. Le ver blanc du hanneton était en effet redoutable pour les racines des légumes et cette larve causait autrefois d importants ravages Le problème apparaît quand on regarde les photos de ce ver blanc dans 50 % des cas il ne s’agit pas de hanneton mais du ver blanc de la cétoine dorée La raison est simple le hanneton est devenu très rare en France Les techniques agricoles ont changé en particulier celles des labours et l’ utilisation des pesticides en grande quantité ont fait que cet insecte n’ a pas résisté . Dans mon jardin je fabrique du compost avec tout ce qui est végétale - le volume obtenu par an est autour du mètre cube Il est peuplé d’une grande quantité de gros vers blancs . D’emblée il faut savoir que les vers blancs des deux espèces ont presque la même taille. . A l’état larvaire ces deux coléoptères se ressemblent beaucoup. .. Deux éléments simples mais difficiles à apprécier . Taille : Larve de hanneton (ver blanc) : 3 à 6 cm Larve de cétoine dorée : 2 à 4 cm Couleur : Larve de hanneton : Blanc-jaunâtre avec une tête marron. Larve de cétoine dorée : Blanc-grisâtre avec une tête marron. Ver blanc de hanneton: Ce ver présente: -des mandibules plus longues que les antennes. -les pattes de grandes tailles au moins égales à la largeur du corps. - une partie postérieure qui a tendance à s’effiler de type pyramidal. Ver blanc de la cétoine: Ce ver présente ** Une partie postérieure volumineuse et arrondie (un peu plus large que le reste du corps. **La mandibule du ver de la cétoine dorée est petite et ne dépasse pas les antennes.. **Des pattes de petites tailles largement inférieures à la largeur du corps : La larve de la cétoine présente des poils disposés en circonférence autour du corps: Ces poils sont le vrai moyen de déplacement de la cétoine Si on observe cette larve le corps est animé d’un mouvement ondulatoire - qui fait que chaque anneau de poils chacun à son tour devient un moyen d’ ancrage qui permet la propulsion du corps ( quand on la regarde se déplacer on ne la voit pas utiliser ses pattes sauf pour se stabiliser) La cétoine n’ a pas d’yeux Si les poils sur le corps ont un rôle locomoteur ; les poils autour de la mandibule se comportent comme des vibrisses qui lui permettent de prendre conscience de son environnement ;La larve de la cétoine dorée mange surtout les plantes en décomposition et ne s’ attaque pas aux végétaux en cours de développement Les vibrisses permettent à leur porteur de transmettre le sens du toucher (à l'instar de la peau) et de détecter le mouvement dans leur environnement proche. Ces vibrisses sont très présentes chez les mammifères on connaît bien les vibrisses du chat ). Schéma du cycle du hanneton : Conclusion La destruction des cétoines dorées est en cours. -Pourtant cet insecte est une bénédiction il est un excellent composteur et un pollinisateur actif. De plus il est très joli à voir évoluer avec son aspect vert brillant et son vol lourd accompagné par un bourdonnement grave. Dans mon jardin j’ai des larves de cétoines dorées dans les platebandes où le compost de l’année a été étalé et je n’ai jamais constaté de dégradation dans les cultures. Par contre quand vous trouvez ce ver blanc si vous tournez la terre l‘ idéal est de le mettre dans le compost de feuilles que vous avez réalisé en automne ,Sa dégradation en sera améliorée. En général, les larves vivent entre 2 et 3 ans avant de se transformer en adultes. Il faut donc les transvaser dans le compost de l’année 2 fois ( il y a cependant de nombreuses larves qui restent dans le compost étalé). Quand on trouve des nymphes il est nécessaire de les mettre dans le nouveau compost de feuilles très légèrement en dessous de la surface du compost. Il est important de noter que les adultes cétoines dorées ne vivent que quelques mois, généralement de mai à octobre. Ces cétoines dégradent un peu les fleurs des arbres fruitiers en mangeant quelques étamines – ce qui est négligeable. La larve de Cétoine dorée est un met de choix pour quelques oiseaux vermivores ou omnivores comme le Pic vert, le merle noir ou la Corneille par exemple. Mais elle est également appréciée des musaraignes et des taupes. Tous ces prédateurs permettent de réguler la population de cétoines dans un jardin naturel et équilibré, évitant ainsi les soucis de destruction de fleurs trop importants. Il est inutile et parfaitement nuisible que l’homme y fasse intervenir sa chimie. References :: https://plantes-jardins.fr/hanneton-cetoine/ http://www.terrevivante.org/517-le-hanneton.h http://www.gerbeaud.com/jardin/jardinage_naturel/cetoine-doree-larve-compost,1430.html Dominique

Pin maritime Floraison Dans un premier article la floraison du thuya a été présentée - L’ aboutissement 1 an plus tard est la formation de strobiles qui vont prendre leur temps pour libérer leurs akènes https://forum.MikrOscOpia.com/topic/19992-thuya-la-floraison/#comment-82900 Le pin maritime est un peu plus en retard dans sa floraison que le thuya Examen d’une branche de deux ans : 1 Cône qui arrive sur sa troisième année 2 Cône qui commence sa seconde année 3 Rameau de l’année en cours de croissance 4 Les cônes mâles qui sont situés à la base du rameau de l’année 5 Les fleurs femelles - quasi invisibles qui sont situées à l’extrémité du rameau de l’ année et qui vont permettre le développement d’un ou de deux nouveaux cônes Les cônes mâles Pour examiner ces fleurs il est réalisé une coupe de la tige de croissance Cette image montre la tige centrale du rameau de l’ année sur laquelle vont se développer en rayons étagés de nombreux rameaux porteurs de sacs polliniques, soit une soixantaine pour chaque rameau ( A cette période début mai tous les sacs sont ouverts – la pollinisation tire à sa fin.) Les sacs sont ouverts et ont libéré un nombre considérable de pollen en 15 jours A Ballonnet B Intine C Exine D Celllule gamétogéne Un grain de pollen est un gamétophyte mâle composé de deux cellules : une cellule végétative qui formera le tube pollinique et une cellule gamétogène (n). Entre la zone porteuse des sacs polliniques et le sommet du rameau les aiguilles du pin se développent lentement Les aiguilles se forment pas deux dans un même sac membraneux. La fleur femelle : Au sommet du rameau s’ ouvrent 1 à 2 fleurs femelles ( cette présence n’ est pas retrouvée sur tous les rameaux de l’ année ) La fleur femelle apparaît comme un petit bouton de couleur rosée entourée des nouvelles aiguilles en cours de formation . Une coupe est réalisée ( examen au X 40 panorama de 27 photos): La forme du futur cône est déjà ébauchée on remarque que l’ étagement de l chaque unité ( ovule+ écaille ovuligéne ) est déjà en place ( chez le thuya il avait été noté une migration secondaire des ovules ) Chaque cône femelle est constitué d'un axe portant des écailles ovulifères disposées à l'aisselle d'une petite bractée, le tout simulant une "inflorescence". Chaque écaille produit sur sa face supérieure deux ovules dont les orifices (micropyles) sont orientés vers l'axe du cône. L’ensemble des structures constituant l’ovule ou gamétophyte femelle A Micropyles sur lesquelles vont se fixer les grains de pollen B Nucelle C Megasporophyte haploïde issu du développement d’une méiospore. D Téguments A Une fois la fécondation réalisée par la fixation d’un grain de pollen sur les micropyles l’akène va lentement se développer .A la fin de la deuxième année les gros cônes femelles ne sont plus alimentés par la plante mère et la sécheresse du cône provoque l'ouverture des écailles. Les écailles s'écartent du rachis central du cône libérant les graines qui sont le plus souvent ailées. Cette aile leur permet de parcourir de longues distances grâce au vent. On parle d'anémochorie (ou dissémination anémochore). Cela permet à l'espèce de conquérir de nouveaux espaces. 2 ans plus tard l’akène terminé pourra être pris en charge par le vent ou les oiseaux permettant la dissémination de ces graines Pour le pin maritime la maturation de la graine nécessite 3 ans Position des deux akènes sur l’écaille ovuligéne. Cette observation est à suivre . En début d’hiver une coupe du cône femelle sera réalisée pour définir l’ évolution au cours cette lente maturation Le cycle de développement a été abordé avec le premier article portant sur la floraison du thuya . Dominique

Thuya la floraison Il est difficile de voir un thuya en fleurs La première raison est que la majeure partie des thuyas est réduite à l’état de bonzaï puisqu’ils servent à faire des haies 2 types d utilisation des thuyas ( ceux de ma clôture ) A en haie B libre de se développer La seconde raison est que chez les thuyas qui ont la chance de grandir les fleurs sont très cachées - et il faut pour les découvrir regarder les branches avec attention On découvre alors qu’elles sont légions La preuve ::où sont les fleurs :sur cette photos vue par un passant ? A les fleurs femelles B les fleurs mâles la majorité des conifères est monoïque ( les deux sexes sont sur la même plante) C les strobiles de ‘l’année dernière ( on ne parle pas de cônes chez les thuyas mais de strobiles comme chez ‘l’aune qui possède de petits glomérules ligneux marron foncé nommés strobiles.) Ils persistent toute l'année sur l'arbre, les akènes qu'ils contiennent étant dispersés par le vent lentement. Pour le thuya les strobiles forment une bille de 1 cm de diamètre , elles vont rester sur les branches encore une demi année le temps que les akènes soient totalement dispersées - Fleurs mâles Elle est relativement la plus visible ( en raison de sa couleur rouge ). Elles sont situées sur la partie .extrême de la petite brindille qui s’ est développée l’ année dernière Grossissement 40 La fleur mâle est formée par le développement autour d’ un axe central de multiples sacs polliniques ( autour de 880 µm de diamètres ) ( certains sont blancs d’ autres sont rouges ) Dans le cas de Gymnospermes on ne parle pas d’ anthères comme pour les Angiospermes (bien que la fonction soit parfaitement la même.) Chaque paquet de 3 sacs est protégé par une petite écaille A l’intérieur se trouvent des milliers de grains de pollen. La forme des grains de pollen change vite à l’ air libre - Ils semblent se ratatiner par déshydratation . En moins de 15 jours les grains de pollens sont dispersés . Il ne reste que les écailles protectrices mais désormais vides de pollen. Les fleurs femelles Au milieu de la brindille de l’année dernière se trouvent de toutes petites fleurs vertes et très peu visibles . Elles sont légions Elles sont minuscules entre 1 et 1,5 mm de largeur. Cette fleur va rester ouverte quelques jours seulement puis se refermer pour protéger les ovules ( il a été remarqué que l’ ouverture de ces fleurs coïncide avec l’ arrêt de la pollinisation des fleurs mâles de la brindille porteuse ) pour éviter une homogamie . Une fois refermée la fleur va évoluer très vite en moins de 10 jours Aspect de la fleur définitivement fermée ( début de la formation de la strobile = ). Coupes suivant les étapes de l’évolution de la structure de la strobile . 1 la fleur vient de se fermer: Sur la coupe on distingue seulement 6 ovules qui ont reçu leur grain de pollen .A noter la présence de micropyle en fait qui remplace les stigmates L'absence de stigmates chez les gymnospermes est l'une des principales différences entre les gymnospermes et les angiospermes. C'est une adaptation qui leur permet de se reproduire dans des environnements où l'eau est rare, car la pollinisation par le vent ne nécessite pas d'eau pour transporter le pollen. ( pour les abeilles il faut du nectar pour les attirer donc de l’ eau ) A partir de ce moment la fleur femelle va modifier sa disposition géographique de façon à aboutir à la boule caractéristique de la strobile 2 Première migration des écailles ovigènes -( chez les gymnospermes l’ ovule est simplement posé sur une écaille fertile où il va se développer - Il n’ y a pas de Gynécée comme chez les Angiospermes ) . 8 jours plus tard : A l’ akène en formation B l’ écaille ovigène porteuse Cette structure va doucement prendre du volume pour atteindre la taille d’une bille de 1 cm de diamètre Les akènes vont murir et vont attendre bien protégés une année avant que le vent ne les prenne en charge Les strobiles : A l’origine de la brindille d’ année dernière on retrouve les strobiles qui ont atteint leur évolution ultime. Chaque brindille au printemps dernier était porteuse de centaines de petites boules en ce moment il n’ en reste que 3 à 4 strobiles ( une grand partie a été mangée par les pigeons et les pies ) L’ akène .Ce fruit est n’ est pas soudé au péricarpe La strobile est formée par la réunion d’ écailles ( dans le cas présent on en compte 6 ( il peut y en avoir plus ) ;le comptage est d’ailleurs délicat en raison de l’ imbrication des structures ).- Sur ces écailles reposent les akènes à raison de 2 par écaille ( pas toujours Une fois leur maturation terminée les akènes se détachent. La graine est toute petite souvent autour de 1,5 mm /Leur dispersion est assurée surtout par le vent et les oiseaux Il a fallu 1 an avant d’ arriver à ce résultat. Image le 25 avril 24: A partir de ce moment-là les strobiles vont se développer doucement durant l’ année Elles vont commencer à s’ouvrir avec l’ hiver et la chute des températures . Discussion Le cycle du développement du thuya est complexe Dans les grandes lignes Les Cônes mâles sont formées de feuilles fertiles ( les microsporophylles ) Ces microsporophylles contiennent des cellules mères ( les microsporocytes - ( 2n chromosomes) Sous l’ effet d’une meiose chaque microsporocyte va donner naissance à 4 spores qui donneront les grains de pollen .Chaque grain de pollen chez gymnospermes contient 4 cellules ( cellule prothalienne,-cellule socle -cellule spermatogéne -cellule d’ enveloppe) Les Cônes femelles sont formés de feuilles fertiles (carpelles ) .Sur chaque feuille fertile ( écaille ovigène ) se développent deux ovules ( 2n chromosomes ) Suite à une Méiose elles vont donner naissance à 4Mégaspores - ( n chromosomes) Ces mégaspores sont complexes mais un des composants est la cellule fertile ou oosphére ( contenue dans un petit récipient l’ archégone ) ( sur les 4 il ne reste qu’une mégaspore au final qui donnera l’ ovule ) Grâce au développement du tube pollinique (du pollen transporter par le vent ) il y a fusion d’un noyau spermatique avec le noyau de l’oosphère et formation d’un Zygote ( 2 n chromosomes ) Dans ce système les gamétophytes sont nourris par les sporophytes ( l’ écaille ovulifère nourrit la graine ) ce système de maturation va prendre 1 an. La graine est toute petite souvent autour de 1,5 mm /Leur dispersion est assurée surtout par le vent et les oiseaux Dominique. .

Bonsoir Merci pour vos messages; Le montage des squelettes d' animaux de notre environnement était autrefois très prisé . La technique n' est pas complexe mais elle nécessite une démarche à petits pas . Pour monter une tortue , comme il faut beaucoup attendre entre chaque manipulation. il est nécessaire de compter au moins 2 mois entre l' animal brut de décoffrage et sa présentation définitive Je fais cela depuis très longtemps et j' ai ainsi plus d' une trentaine d oiseaux - petite mammifères -serpents tous trouvés sur le bord des routes de campagne ( la plupart tués par le choc avec les voitures ). Quand j' étais jeune je montais des avions ; Bien amicalement Dominique

Carapace de la tortue Dans la première partie , la carapace d’ un crustacé a été exposée. https://forum.MikrOscOpia.com/topic/19978-carapace-comparaison-carapace-du-crabe-et-de-la-tortue-d’eau-première-partie/ D’ abord une définition L'écaille de la tortue est appelée carapace lorsqu'elle recouvre le dos et plastron lorsqu'elle recouvre le ventre. La carapace et le plastron sont reliés par un pont osseux. Il y a 25 ans un de mes gamins ramène 3 tortues de Floride de la grosseur d’un œuf cadeau d’un camarade qui n’ en veut plus dans sa chambre – Elles sont installées dans grand aquarium mais si on ne change pas l’ eau très régulièrement cette eau dégage une odeur désagréable -Donc il est pris la décision de les faire vivre dans la vaste mare qui jouxte la maison - Elle vivent leur vie tranquillement depuis 25 ans ( l hiver elles s’ enfoncent dans la vase et réapparaissent au printemps ) Mais -j’ ai retrouvé l’ une des 3 tortues sur la pelouse sans vie. Cette carapace révèle une maladie - l’ examen constate une déformation en creux sur la ligne médiane de la carapace il s’ agit d’une ostéofibrose en lien avec un manque en calcium ( ce qui peut s’’ expliquer car: la mare est alimentée par l’eau de pluie seulement ) Organisation de la carapace ( L’ histoire date de l’ année dernière - donc la tortue a été laissée dans un endroit aéré et sec pendant ce temps Les tissus que les insectes nécrophages n’ont pas voulus , ont été traités par des bains de hydroxyde de potasse à 5 % puis Eau de Javel diluée au ¼ puis Eau oxygénée à 12 % - séchage et montage à La super glu ) Coupe de la carapace Aspect général d’une section de l’écaille de la tortue L'organisation histologique d'une écaille de tortue est complexe et peut être divisée en plusieurs couches distinctes : La prémiére constatation qui n’ est pas evidente est que la carapace de la tortue.est formée de plaques osseuses imbriquées recouvertes d'écailles individuelles kératinisées., de la taille d’un ongle de pouce ( limite de la plaque entre A et B -qui est en dehors du cadre de la photo) Chaque plaque qui est nommée écaille a une organisation en 2 parties fort différentes a la couche cornée proprement dit ( l’ épiderme fait de kératine ) b la couche osseuse A couche cornée ( l' écaille ) Coupe de la partie superficielle de l ’ écaille ou plus exactement de juxtaposition de nombreuses écailles individuelle. A Constituée de kératine, une protéine fibreuse. C'est la couche la plus externe et la plus dure, responsable de la protection contre les abrasions et les UV. Elle est composée de cellules mortes imbriquées et kératinisées. B . Couche centrale Constituée de cellules mortes aplaties - allongées tassées La Présence de mélanine pigmente l'écaille. (a)) C Couche dermique: Cette couche fait un lien entre la couche cornée et la zone osseuse -( dans cette observation sur une tortue morte depuis quelques mois elle n’ est plus cellulaire ) Constituée de tissu conjonctif dense. Contient des vaisseaux sanguins, des nerfs et des terminaisons nerveuses . Cette couche assure la croissance de l’ écaille cornée. B Couche osseuse: A Ecaille B – C – D C'est la couche la plus interne, elle confère à la carapace sa rigidité et sa résistance. ( cette image est un diaporama de 10 photos) Elle est composée de : B Os dense os periostique de type Harversien ( ligne noire du côté externe représente le périoste dont le rôle est la synthèse du tissu osseux Le systéme Harversien est du à la présence d'ostéon, également appelé système de Havers d'après son découvreur Clopton Havers,.C’est l'unité fonctionnelle de base de l'os compact (cortical ) voir article suivant https://www.aquaportail.com/dictionnaire/definition/11931/osteocyte C Os dit spongieux: avec ses lacis de trabécules et spicules osseux formant des logettes . Dans ces logettes se place la moelle osseuse ( tissu qui fabrique les globules sanguins) D os Haversien on constate que la limite interne est fragmentée. Ce qui constitue la limite interne des plaques. La plaque osseuse est directement couverte d’une couche cornée Cette organisation est identique à celle de nos os plats (omoplate - côtes sternum ) exception faite de l’ hyper kératinisation que représente l’écaille Si on regarde l’ intérieur d’une tortue on se rend compte que sa carapace comme son plastron sont le résultat de l’ ossification d’un équivalent de notre peau avec ses aponévroses sous-jacentes . Références : https://fr.wikipedia.org/wiki/Tortue_marine https://www.mdpi.com/2306-7381/9/8/423 https://fr.wikipedia.org/wiki/Carapace_de_tortue Dominique

Il faut noter que la plante n’ arrive pas à digérer la chitine de l’ exosquelette des insectes - qui vont doucement encombrer l’ intérieur de l’ urne ( dans le cas de cette observation les urnes sont vides - ce sont des plantes de jardinerie vendues à un âge précoce et vivant dans un milieu quasi aseptisé Cet aspect spectaculaire des plantes carnivores ne doit pas cacher le fait que la principale source de protéines est fournie par la synthèse chlorophyllienne :Les cellules de cette feuille contiennent toutes des chloroplastes. Grossissement X600 Dic: Discussion *************** Dans plusieurs articles il est dit que cette feuille a été obtenue par un enroulement du limbe , suivit de la soudure des deux bords -Cette explication permettrait de rendre compte de la situation de la face supérieure d’ une feuille plate qui ici représente la face interne du tube Les deux coupes suivantes s’opposent à cette affirmation Ces deux coupent sont réalisées un peu au- dessus du niveau de la photo numéro 3 de cet article. Elle met en évidence que le tube se forme dès la base . --Dans un premier temps il y a disparition du parenchyme lacuneux de la nervure principale . --Dans cet espace la différentiation cellulaire va aboutir à fabriquer un épithélium et un parenchyme cortical identiques à ceux de la face supérieure d’une feuille (Pour la synthèse et l’ organisation de cet épithélium le code génétique n' a donc pas été modifié ). --Le tube ainsi organisé va progressivement s' allonger pour atteindre sa taille définitive . Il n’y a donc pas d’enroulement ni de creusement Quelques informations sur les Sarracénies ( Ref 1 ) Les Sarracénies ou Sarracènes (le genre Sarracenia) sont un genre de plantes à fleurs de la famille des Sarracéniacées. Ce sont des plantes carnivores originaires du sud-est des États-Unis et du Canada. Ce sont des « carnivores à pièges passifs » (sans mouvement mécanique). Ces pièges sont des feuilles modifiées en forme d'urne et protégées par une coiffe, sauf chez Sarracenia psittacina chez qui elle a disparu par soudure de ses bords. Le nom de la plante fait référence à Michel Sarrazin, chirurgien, médecin et naturaliste en Nouvelle-France1. Description et caractères À l'extrémité apicale, des glandes nectarifères sécrètent un suc qui attire les insectes en plus de la synthése d’une pheromone la Sarrcenine Il a été montré que les frelons asiatiques sont particulièrement attirés par cette molécule dont on essaie de faire la synthèse. Pour les sarracénies à urnes verticales, la coiffe ne sert pas à refermer le piège mais à éviter que l'eau n'y rentre. Chez Sarracenia minor elle empêche aussi les insectes de ressortir ce qui fait que les poils obliques sont absents. Chez Sarracenia purpurea, les urnes sont couchées et la coiffe facilite au contraire la récupération de l'eau de pluie. L'eau est nécessaire pour piéger par noyade les insectes et gastéropodes mais facilite également la digestion. Les sarracénies produisent des fleurs qui apparaissent en général à partir de leur quatrième année, au printemps pour les précoces Sarracenia flava et Sarracenia oreophila, jusqu'au milieu de l'été pour Sarracenia minor et Sarracenia leucophylla. Classification Règne Plantae Division Magnoliophyta Classe Magnoliopsida Ordre Nepenthales Famille Sarraceniaceae Genre Sarracenia L , 1753 Références https://fr.wikipedia.org/wiki/Sarracenia_leucophylla https://forum.MikrOscOpia.com/topic/14718-sarracenia-purpurea-plantes-carnivores-1/#comment-54270 article de Pierre https://www.futura-sciences.com/planete/dossiers/botanique-plantes-carnivores-478/page/4/ https://positivr.fr/sarracenia-plante-carnivore-mange-frelons-asiatiques/ https://www.kloranebotanical.foundation/la-botanique/dossiers/plantes-carnivores/comment-mangent-les-plantes-carnivores https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35604105/ digestion https://www.carnivorousplants.org/cp/carnivory/digestion https://academic.oup.com/plphys/article/190/1/44/6590657 Dominique.

Plante carnivore Sarracenia leucophylla Poursuite de l’étude des feuilles https://forum.MikrOscOpia.com/topic/16067-feuille-histologie-consistance/#comment-62043 https://forum.MikrOscOpia.com/topic/19892-sansevieria-cylindrica-%C3%A9tude-histologique/#comment-82518 Il a déjà été présenté des feuilles plates ( les plus fréquentes ) les feuilles cylindriques ( Sensevieria cylindrica ) ;cette fois ci on se penche sur les feuilles tubulaires Les plantes carnivores ont transformé leurs feuilles en piège La Dionée est une plante carnivore à piège actif qui referme rapidement ses « mâchoires » autour de sa proie ; les Nepenthes sont dotées d’un piège passif formé d’urnes remplies de liquide dans lesquelles les insectes se noient ; le Drosera est pourvu d’un piège semi-actif sous forme de feuilles collantes desquelles les insectes ne peuvent plus se dépêtrer. Chez Sarracenia leucophylla le piège est un tube où vont tomber les insectes comme chez les Nepenthes Cette plante peut se trouver facilement en jardinerie ( mais dans ce contexte la plante est de petite taille ). La morphologie en tube n’existe pas dès le début de la formation des feuilles -mais la forme définitive de la feuille va s’installer rapidement. . Pour comprendre l’organisation de cette feuille il est réalisé des coupes étagées de bas vers le haut. Partie basse Dans cette partie le tube n’est pas encore constitué: A – Axe vasculaire B – Parenchyme lacuneux Cet aspect de la base de la feuille sera discuté plus tard Coupe partie moyenne: Coupe au niveau du tube. Cette coupe montre qu’ à l’origine de la courbure il existe un axe vasculaire ( A ) comme habituellement présent dans les nervures des feuilles .La zone de division est donc la nervure principale de la feuille - par contre dans cette observation il n’ existe pas de nervures secondaires ni de nervioles . Organisation d’une feuille : L’ organisation de la répartition cellulaire de cette feuille est en fait classique: A Cuticule B Parenchyme cortical Il existe une seule couche de cellules épithéliales avec un faible développement du parenchyme palissadique C on constate un fort développement du parenchyme lacuneux qui représente une grande partie du parenchyme D il existe très peu d’éléments ligneux secondaires En fait on se trouve dans une architecture très proche de la feuille de nénuphar Par ailleurs on constate si on se réfère à la structure la plus fréquemment rencontrée chez le feuilles que la face supérieure de la feuille forme la face interne du tube et que la face inférieure forme la partie la plus externe de ce tube. Il faut en conclure que la feuille s’est développée comme si elle s’était enroulée sur elle-même avec soudure des bords ( la face supérieure de la feuille est donc devenue interne ) - Cette interprétation est fausse on le verra plus tard. Sur la face externe il existe des stomates en connexion avec les zones aériennes de la feuille - La fonction piége : Le piège est à la fois chimique et mécanique : Le couvercle de la tige est porteuse d’une grande quantité de poils : L’ entrée de l’ urne est le lieu de synthèse d’une molécule attractive la Sarracenine Coupe du bord de la feuille qui révèle que ce bord se recourbe sur lui même: Une fois l’insecte engagé dans le tube le retour à reculons est entravé par un ensemble de poils raides dont l’ orientation s’oppose à tout retour ( comme les dents de la couleuvre ). Le tube des Sarracenia crée un biotope ; La digestion est le résultat de plusieurs actions. A Les bactéries Une fois l’insecte bloqué dans le tube la digestion se fait en grande partie par les bactéries. B Les moisissures L’ examen des cellules de la paroi interne de l’urne met en évidence la présence de différentes moisissures qui sont situées dans cette observation surtout dans la partie inférieure du tube. C La digestion est aussi assurée par la synthèse d’enzymes .l’ examen des cellules de la plante met en évidence la présence de nombreux Leucoplastes .

Bonsoir Si on reconsidère les images en faisant abstraction de la structure des ommatidies des insectes avec un cristallin pour chaque ommatidies les formations rondes ( B ) de la photo 8 et celle de la formation de la photo 9 peuvent être considérées comme une coupe perpendiculaire des tubes de l’ œil Si on regarde attentivement la photo 9 chaque rond est limité par une paroi bien visible. Il est possible de lire cette image: a cellules pigmentaires périphériques b cellule rétinienne c rhabdome (la zone transparente centrale ou passent les rayons lumineux. Pour le cristallin sur la photo 8 on constate que sa surface interne est bosselée - et que chaque convexité correspond au départ de quelque chose qui pourrait être un tube. ( par contre le cristallin n' est pas individuel à chaque unité de vision comme pour les insectes ) En fait la difficulté d’interprétation vient en grande partie des plans de coupe de l’échantillon. Il sera donc nécessaire de refaire ces coupes pour être certain de la bonne interprétation; mais de toute façon on se trouve bien devant un œil . composé Amicalement Dominique

Bonsoir Tryphon et Solito de Solis Merci pour toutes ses informations ( et le livre de ED Yong ) .Je vais essayer de contacter une des stations de biologie marine . Il y a une station Ifremer à quelques kilomètres à Port en Bessin . Je vous tiendrai au courant Amicalement Dominique

Bonjour Jean -Marie L’œil dans sa partie supérieure est protégé par la carapace ( que j' ai dissous pour faire les coupes ) cette zone est la zone aveugle. Pourtant en dessous de cette zone couverte par la carapace il existe toujours une membrane rétinienne qui s' est pliée ( et qui ici ne sert semble t il à rien )- Il y a probablement eu un processus évolutif la carapace protégeant l' œil de façon plus efficace. La forme alvéolée représente la totalité de la cornée . La encore pourquoi cette forme alvéolée alors qu" il n' y a pas d' ommatidies derrière -Comme si l' évolution avait conduit à la formation d'une rétine unique tout en gardant la structure alvéolée de la cornée primitive . ( cette interprétation est toute personnelle ). Amicalement Dominique

Araignée de mer : étude de son système optique. Maja brachydactyla Sur le marché l’ étale du poissonnier présente surtout 2 types de crabes - des tourteaux et des araignées de mer -Ce qui est frappant chez ces animaux ce sont leurs yeux en grande partie cachés par leur carapace qui de ce fait semblent saillir de part et d’autre . La partie antérieure de la carapace est découpée .ce qui permet de mettre en évidence la totalité du système optique dans son logement une fois la zone antérieure de la carapace réclinée. Les yeux sont donc situés ce chaque côté à l’ extrémité de deux segments ( les pédoncules ) Le segment proximal (B ) s’articule par son extrémité interne sur un axe central ( C ) qui est immobile Le segment distal ( A ) s’articule pas son extrémité interne avec l’ extrémité distale du segment (B ) .Son extrémité externe porte le système optique. Il est constaté que l’œil de l’ araignée de mer est orienté vers le sol et que de ce fait sa vision vers le haut est limitée même avec les déplacements qu’ autorise cette double articulation Si on réalise une photo épiscopique ( X 40 ) de cet œil on constate que la surface de la cornée est en aspect alvéolée comme le sont les yeux des arthropodes qui possèdent des yeux composés A noter aussi la présence de poils: On peut donc lire dans de nombreuses publications Les yeux composés existent uniquement chez certains insectes et crustacés. Ils sont constitués d'un grand nombre d'unités visuelles : les ommatidies. » Ce que mes coupes ne mettent pas en évidence Voilà ce qui est constaté L’examen de l’ œil des crustacés de type crabe ne peut se faire que si on décalcifie les échantillons avant de réaliser des coupes Les coupes ont été colorées au trichrome de Gilles Hematoxyline de Gilles – Eosine - bleu d’ Aniline Vue générale On constate donc -- cet œil n’est pas un œil composé comme celui des insectes. -- le cristallin est extrêmement épais -- les encoches dans la zone superficielle du cristallin sont en lien avec l’insertion des poils vus en épiscopie -- la partie profonde est constitué d'une couche pigmentée. Examen d’une division en profondeur En A ces divisions affectent la courbure des fibres du cristallin Elles ont une disposition irrégulière et ne définissent aucun cône ( comme pour les ommatidies des insectes ) par contre elles doivent être à l’origine d’ une diffraction de la lumière par la modification des courbures des fibres du cristallin . La rétine La rétine est constituée de plusieurs couches tissulaires Coupe axiale A – Cristallin B – Tissu gliale C - Ce qui frappe est l'organisation régulier d' éléments juxtaposés .Cette image évoque un œil composé D – Cellules photo réceptrices ou plus probablement couche nucléaire des cellules réceptrices E – Epithélium pigmentaire F Choroïde et Sclére Coupe longitudinale A –Cristallin B Cellules photo-réceptrices L’organisation sur cette photo est faite d’unités arrondies régulièrement espacées Cet aspect est très évocateur des ommatidies Ces ommatidies sont des unités cylindriques .C’est sur la paroi de ces tubes que se développent les cellules photoréceptrices : les cellules de la rétine . Ce type d’ organisation est typique des yeux des insectes C –Cellules pigmentaires D – Choroide E – Sclére ( Sclérotique ) Examen de la zone réceptrice au X 600 C –Cellules pigmentaires D – Choroide E – Sclére ( Sclérotique ) Examen de la zone réceptrice au X 600: Coupe des ommatidies En fait chaque point rouge correspond a un œil .Chaque tube est tapissé avec les cellules de la rétine La lumière concentré par le cristallin va pénétrer dans ces tubes Les photons de la lumière vont activé les cellules photo réceptrice qui vont transmettre l’ information au cerveau ,lieu où va se créer l’ image Par comparaison Œil du poisson https://forum.MikrOscOpia.com/topic/17094-%C5%93il-poisson/#comment-67863O Œil de la crevette https://forum.MikrOscOpia.com/topic/19097-crevettes-2-%C3%A9l%C3%A9ments-d%E2%80%99anatomie/#comment-79200 Œil du calamar https://forum.MikrOscOpia.com/topic/19637-calamar-l%E2%80%99%C5%93il/#comment-81523 La différence d’ organisation est frappante en comparaison avec l’ œil de l’ araignée de mer Le caractère moins sophistiqué chez celle-ci est évident Qu’ en est il de la qualité fonctionnelle ? De toute façon cette qualité est suffisante pour la survie de l’ animal qui vit dans les océans depuis le Cambrien soit il a y 500 millions d’ années Organisation des segments mobiles de l’œil ( Les Pédoncules ) Les deux segments mobiles du système optique de l’ araignée de mer sont de même structure – Coupe du segment proximal . ( X 40 ) Les muscles oculomoteurs vont permettent l’orientation de l’ œil – On compte 6 massifs musculaires Ce fait est à rapprocher de l’ œil humain qui possède six muscles oculomoteurs assurant les mouvements de chaque globe B Le nerf optique Dans le segment distal ( donc qui se termine par l’ œil ) le nerf optique n’ est pas organisé et forme un plexus . Ce qu’il n’ est pas le cas dans le segment proximal . A ce niveau l’organisation en nerf est réalisée avant de pénétrer la carapace et de rejoindre le Protocerebrum A la sortie de la sclérotique Avant sa connexion avec le Protocerebrum Les muscles oculomoteurs sont des muscles striés. A – Les muscles sont de type striés B – Il est possible d’ individualiser un système vasculaire qui coure le long des muscles Règne Animalia Embranchement Arthropoda Sous-embr. Crustacea Classe Malacostraca Sous-classe Eumalacostraca Super-ordre Eucarida Ordre Decapoda Sous-ordre Pleocyemata Infra-ordre Brachyura Super-famille Majoidea Conclusion Reste le probléme du fait que je ne constate pas d’ œil composé comme celui des insectes alors que beaucoup d’ autres publications ne font que relater le fait L’œil composé est bien particulier comme on s’en rend compte dans l article suivant portant sur le cerveau du frelon asiatique https://forum.MikrOscOpia.com/topic/16406-frelon-asiatique-cerveau-histologie/#comment-64192 Reference https://www.sciencedirect.com/ science/article/abs/pii/S1467803906000521 Dominique. Et bonne année à tous

Bonjour Il est vrai que les microtubules ne sont pas visibles au microscope optique - Cette affirmation a été tirée de l' article de référence portant sur l' histologie du Sansevieria. Par contre une accumulation de microtubules peut être visible . Amicalement Dominique

Bonsoir Jean -Marie Pour te remercier de la publication depuis 3 semaines de toutes ces belles planches qui sont le résultat d'un magnifique travail. Amicalement Dominique.

Sur cette coupe longitudinale on constate que les cellules sont organisées en colonnes verticales sur l’ensemble du parenchyme cortical et médullaire. Et en particulier de grosses cellules qui semblent faire des pylones . Particularité des cellules parenchymateuses du Sansevieria Les cellules se « développent au milieu d’un maillage fibreux ( microtubules ) Ces fibres sont bien visibles en lumière polarisée Aspect du parenchyme médullaire ( zone centrale ). A Xyléme B Phloéme Les vaisseaux sont nombreux selon une trajectoire ascendante Coupe longitudinale : Reste à répondre à la question de départ ( comment expliquer la position des feuilles du pot vendu en jardinerie ?) Si on regarde la description de Sansevieria sur un article de Wikipedia il est noté que cette plante peut atteindre 1 mètre Toutes les plantes vendues font 20 cm maximum Par ailleurs la disposition des feuilles est des plus curieuses : chaque feuille semble indépendante comme on l’avait noté au départ La solution est apportée par le dépotage de la plante : Ce qui est vendu est le résultat du bouturage de coupe de la partie haute de la feuille d'une plante déjà bien developpée .Dans la pot vendu il y a 6 extrémités de feuille. L’enracinement s’ est très bien fait avec le mélange de terre qui a permis à ces pousses de développer un racinaire. La multiplication peut se faire par division du rhizome ou par boutures. Les fragments doivent mesurer au moins 7 cm de long et être insérés dans un sable humide. Feuille ou tige ? Faisons une comparaison avec la feuille et la tige de la tulipe: On remarque une similitude d’organisation entre la tige de la tulipe et la feuille de Sansevieria cylindrica Comparons maintenant la structure d’une feuille de Sansevieria trifaciata qui a une forme plate: On constate que son organisation est la même que celle de la variété cylindrica Conclusion Quand on reprend le texte d’une étude scientifique (‘ Reference 1 ) il est parlé de feuilles Dans les traités de botanique il est dit que les feuilles présentent une diversité morphologique considérable ce qui est donc constaté ici puisque l’ aspect de cette feuille est quand même très proche de la structure histologique d’une tige Classification Règne Plantae Sous-règne Tracheobionta Division Magnoliophyta Classe Liliopsida Sous-classe Liliidae Ordre Liliales Famille Liliaceae Genre Sansevieria Espèce Sansevieria cylindrica (Wenceslas Bojer), 1837 Classification APG III (2009) Et pour conclure la fleur de la plante ( image extraite du web ) On remarque tout de suite que les feuilles de cette plante ne sont pas disposées comme les feuilles vendues dans la jardinerie. Dans le cas ci-dessus il ne s’agit pas de boutures mais bien de feuilles qui se sont développées sur un rhizome. Leur caractère cylindrique n’apparait que quelques centimètres au-dessus du pied Donc l’étiquette que portait ce pot de fleur était fausse ;-elle aurait dû être nommée Pot de 6 boutures de Sensevieria Cylindrica CQFD A noter que cette pante possède des propriétés pharmacologiques qui lui confèrent des effets antibactériens, anti-inflammatoires, analgésiques et antipyrétiques. Les études scientifiques ont montré que les extraits de Sansevieria cylindrica sont efficaces contre une variété de bactéries, notamment Staphylococcus aureus, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa et Streptococcus pneumoniae. Ils sont également capables de réduire l'inflammation, la douleur et la fièvre. En outre, la Sansevieria cylindrica a des propriétés antioxydantes qui peuvent aider à protéger les cellules contre les dommages causés par les radicaux libres. Références : https://www.phcogres.com/sites/default/files/PharmacognRes-14-4-412.pdf Dominique

Sansevieria cylindrica étude histologique Au cours d’une visite à la jardinerie de la ville j’ ai été surpris par la forme d’une des plantes - Elle ne présentait que des tiges dressées sans feuille apparente Son nom indiqué sur l’étiquette : Sansevieria cylindrica Le Sansevieria trifasciata est bien connu dans les maisons il fait partie des plantes d’ appartement souvent rencontrées en Normandie - Mais dans ce cas ses feuilles sont plates Dans le cas présent les feuilles sont cylindriques Une question se pose d’emblée pourquoi cette disposition de feuilles parallèles dès la sortie de la terre. ? Cette présentation porte la structure histologique de cette plante . Coupe de la feuille cylindrique : Les coupes sont très faciles à bien réaliser Coupe en partie haute (diaporama de 70 photos au X 80) Coloration bleu d’ aniline et safranine A Les Sclerenchyme lignifé est en périphérie - il n’existe pas de cylindre central bien dessiné B Présence fibres lignifiées dans le plan transversal C Axes vasculaires Xyléme et Phloem Contrairemenr aux autres feuilles il n’ existe pas de parenchyme spongieux qui d’ habitude forme des chambres ouvertes vers l’ extérieur pour permettre les échanges gazeux à travers les stomates et contrairement aux tiges il n’ y pas non plus de parenchyme médullaire Donc le mésophile ( partie moyenne de la feuille est homogène . Cependant première constation est que ce type de structure est plus proche de la structure d’une tige que celle d’une feuille L’épiderme est couvert de stomates: A cellules stomatiques (dites de garde ) B ostiole qui ouvre dans la chambre sous stomatique Sur ces deux photos il est noté le caractère très épais des cloisons intercellulaires: Les chloroplastes La photosynthèse est assurée par les Chloroplastes ( contenant la chlorophylle ) qui sont très nombreux dans les cellules les plus externes du parenchyme cortical Organisation de la zone corticale: A Cellules corticales - on constate qu’ il n’ existe pas de cellules palissadiques comme sur les autres feuilles et que toutes les cellules ont le même aspect - bien rond B Axe de sclerenchyme La cuticule La cuticule est la couche protectrice de la plante vis-à-vis des agressions extérieures. A cuticule B cellules épithéliales C cellules du parenchyme cortical La cuticule est formée de deux couches A cire qui forme la couche la plus externe B cutine et subérine C semble apparaître par places des lacunes aériennes. La rigidité de cette plante Cette rigidité est assurée par la présence de faisceaux fibreux correspondant à la une forte lignification du sclérenchyme Coupe longitudinale: La structure du parenchyme central est très homogène puisqu’ il ne présente des cellules arrondies de taille variable - Ce qui est frappant est leur organisation :

Mousse sur le toit Depuis plusieurs mois les mousses se développent sur le toit en tuile de la maison. Il semble y avoir plusieurs espèces .On va s’intéresser à l’espèce dominante Examen à la binoculaire A – Gamétophore B – Sporophyte Cette mousse se développe sur une hauteur de 2 à 3 cm suivant le lieu du toit et forme des plage de plus de 50 cm . Avant d’ aller plus loin considérons le schéma qui décrit le thalle des mousses Ce qui est caractéristique des mousses est que le Gametophore femelle ( qui est issu de la germination d’un Zygote ( 2n ) est porteur du Sporophyte - Il y a donc des gametophores mâles porteurs d’ anthéridies qui contiennent les spermatozoïdes flagellés ( absents de cette observation ) la fécondation des deux gamètes se fait dans l’ eau et donnera naissance à un prothalle puis à un thalle . La première constatation sur l’ échantillon est que le Gamétange a développé un rameau principal très ramifié avec des rameaux bien différentiés par rapport à la tige principale Les sporophytes se développant dans le prolongement de ces rameaux secondaires. Cette mousse est donc dite cladocarpe Les rhizoïdes : Les rhizoïdes servent à la fixation au sol Leur structure est pluricellulaire –les cloisons intercellulaires sont obliques La tige La tige est d’une largeur de 0,4 mm L’axe de la tige est occupé par un parenchyme médullaire ( il n’ y a pas ici de cylindre central ) On constate que les lamelles ( B ) se développent de part et d’ autres d’une fausse nervure ( A ) qui se fixe directement sur la tige ( il n’ y a pas de pétiole ) .Les feuilles ( lamelles ) sont développées sur deux axes opposés . La feuille est lancéolée, les bords sont lisses sans échancrure. Coupe d une feuille : La fausse nervure à fort grossissement : A – cellules internes à grand lumen -Leptoide qui sont des cellules conductrices B - et en periphéries les - cellules sont à lumière étroite à paroi épaissie --Stéréides qui sont des cellules de soutien. La feuille est sans nervure secondaire avec juste une fausse nervure centrale Les cellules du parenchyme des lamelles ( le limbe chez les feuilles angiospermes ) sont disposées en ligne allant du haut en bas de la feuille Sur la photo de gauche on découvre l’aspect du bord de la lamelle (feuille) Sur la photo de droite on constate que la paroi a développé des expansions sous forme de verrues dans lesquelles la cellule ne s’engage jamais Le Sporophyte ( voir schéma initial ): Le sporophyte est composé (voir schéma de départ) A Soie B Urne qui contient *** le peristome et la columelle qui ici ne sont pas visibles mais que l’ on devine avec la transparence ( première fermeture ) ***opercule qui ferme le contenu de l’urne (seconde fermeture) C la calyptra qui coiffe l’urne (troisième fermeture) Ainsi les spores qui sont contenues dans l’ urne doivent être libérées de 3 cloisons avant de pouvoir étre dispersées pas le vent Coupe du sporophyte à différents étages : Cette coupe du sporophyte a permis de mettre en évidence la présence de spores Elles sont mesurées ici autour 8 µm: La taille des spores des mousses est très variable - elle peut aller de 2 à 50 µm suivant les espèces Ces spores sont produites sur de longues périodes assurant ainsi un ensemencement efficace grâce au vent et à l’eau Quel est le nom de cette mousse ? La position cladocarpe des rameaux la fait classé dans le genre Dicranum Règne Plantae Classe Equisetopsida Sous-classe Bryidae Ordre Dicranales Famille Dicranaceae Genre Dicranum Par contre pour le nom binomiale les choses se compliquent Sur le site de MikrOscOpia il y a plusieurs Dicranum https://forum.MikrOscOpia.com/topic/5282-dicranum-viride-sull-lesq-lindb/#comment-22603 https://forum.MikrOscOpia.com/topic/598-dicranum-montanum/#comment-2394 https://forum.MikrOscOpia.com/topic/3834-dicranum-scoparium/#comment-18812 Les caractéristiques des mousses décrites dans ces observations ne collent pas bien avec l’ échantillon prélevé ici. Il a été décrit plus de 30 espèces ce qui nécessite des flores spécialisées Références Mousses et Hépatiques de France vincent Hugonnot et coll Edition biotope Biologie végétale Raven – Evert – Eichhorn Edition deboeck Dominique.

Graphium Moisissure du bois Planche En ce moment je fais des coffres pour cultiver mes fraisiers ; il est plus facile de les entretenir lorsqu’ils sont cultivés de cette manière et la production de fraises est excellente J’ai acheté des planches de coffrage chez le marchand du coin où les planches sont conservées au grand air protégées par un simple auvent La planche supérieure présente un enduit discret noir Les planches en dessous ne présentent rien comme particularité . A l’atelier sur la planche A il y a des trainées noires, rien sur la planche B qui a été protégée de ‘l’humidité de l’air . L’examen en episcopie d’ un copeau de cette planche montre : Le bois est couvert de nombreuses colonnettes noires comme des - poils dressés . Au sommet de quelques-unes on note la présence d’un petit point blanc. Exploration en episcopie à fort grossissement de cet échantillon. Aspect de têtes conidiennes Ces têtes ne sont pas rondes ni homogènes ( ce qui élimine un Rhizopus ) leur diamètre moyen est autour de 84µm. L’étude de cette moisissure va utiliser 2 colorants ( Le Bleu coton Lactophénol et Le rouge Congo ammoniaqué ). Image de la totalité du Thalle : Analyse de cette image : Les hyphes émergent du bois à certains endroits de la planche Elles prennent l’ aspect de rhizoïdes - En ( B ) les ponctuations des vaisseaux du Xylème des fibres de bois Surmontant ces hyphes s’est développée la tige : La colonette n’ est pas fait d’un seul hyphe mais de l’ association de nombreux hyphes fertiles ( A ) Ce regroupement se nomme une Corémie. Certains hyphes développent aussi des branches latérales ( B ) Wikipedia nous dit:Une corémie, ou synnema, est chez certains champignons une petite colonne non anguleuse composée d'un faisceau d'hyphes dressés et formant un conidiome, c'est-à-dire un regroupement de plusieurs conidiophores. Ce genre de structure est lié à la reproduction végétative car il produit des conidies. La corémie est dite « déterminée » lorsque la zone fertile est située dans la partie apicale de la colonne et « indéterminée » lorsque la zone fertile est située dans toutes les parties. Il existe aussi des corémies composées dont l'axe principal porte des ramifications latérales fertiles Ce qui est le cas de notre observation. avec un maximum apical donc cette moisissure développe une corémie de type déterminée La colonette est surmontée d’un buisson de conodiophores Ces têtes sont formées par le regroupement d’hyphes conidiogénes Les conidies ( spores ) arrondies elles semblent uniques au sommet d’un conidiophore et sont d’une taille autour de 2,30µm Cet aspect évoque beaucoup Le genre Graphium Domain: Eukaryota Kingdom: Fungi Division: Ascomycota Class: Sordariomycetes Order: Microascales Family: Microascaceae Genus: Graphium A noter que Graphium Ulmi -( autre nom Ophiostoma Ulmi) est un représentant de ce genre qui contient une centaine d’ éspéces Graphium Ulmi est responsable de la graphiose des Ormes et donc de la raréfaction de cet arbre https://atrium.lib.uoguelph.ca/items/cfedaa61-3d6f-4733-8592-78d38fab352e Référence https://drfungus.org/knowledge-base/graphium-species/ Graphium produces hyphae, conidiophores, synnemata, conidia, and rhizoid-like structures. Hyphae are septate and conidiophores are simple, long, and dark in color. Synemmata are bundles of erect hyphae and conidiogenous cells bearing conidia. The conidia are one-celled, oval, and colorless. They form clusters at the apex of each synnema. Rhizoid-like structures may be observed at the base of the synnema. Graphium spp. are recognized by their distinctive, erect, black synnemata, each bearing a single, terminal, ball of one-celled, hyaline conidia produced from annellides Dominique..

Moisissure mais laquelle ? Les moisissures nous entourent - il y en a dans tous les endroits où nous vivons. Et souvent dans les confitures ou les jus de fruits négligés dans une bouteille par exemple Mais comment savoir qu’elle espèce est présente. Si un prélèvement est fait à partir de la surface , une fois mis sur une lame il n’ y a que des spores et pas la moisissure reconnaissable avec le sporophore et ses conidies ou le sporange On ne reconnaît pas l’ organisation Le contenu de la bouteille est vidée sur un plateau. Une vue en episcopie souvent ne donne pas de bons résultats Il existe un moyen de faire mieux : Acheter de l’ Agar dans un magasin rayon pâtisserie Dans un verre Eau 1 cuiller à soupe 1/2 Agar une pointe de couteau ( 1 cm ) Sucre une pointe de couteau ( 0,5 cm ) Le mélange fond à 60 °c ( donc au bain-marie on constate que le milieu devient liquide ) A ce moment-là avec une petite tige on pose une goutte du mélange sur la lame - on ajoute goutte par goutte jusqu’ à obtenir le volume souhaité ( le mélange gélifie très vite ) couper le haut de la goutte - ensemencement mise d’un couvre objet – luter 3 côtés avec du vernis à ongles - conserver autour de 22°C Faisons l’expérience La lame est posée dans un boite de Pétri que l’on finit de préparer selon le schéma précédent - Aprés deux jours Examen au microscope Le problème est qu’ il existe une certaine distance entre lame et lamelle - l’ examen au microscope nécessite de varier la profondeur de champ . et qu’il faut un grossissement de 400. L’exploration de la lame est intéressante en raison du fait qu’ une très fine couche de gel se soit formée autour de la goutte.Cette zone est rapidement colonisée par les hyphes La première constatation est que les hyphes issus de spores différents ont tendance à s’ anastomoser X 400 A -- Conidiophore B Métule C – Phialide D --Formation des conidies sur la partie distale des phialides E – Conidies (spores ) Mais en Sciences rien n’ est simple , cette technique facile de mise en oeuvre donnera comme résultat la présence de Penicillium et de Rizopus ; Si on veut se faire développer d’ autres moisissures il faudra réaliser des mélanges nutritifs plus complexes ( ils sont nombreux et dépendent de la moisissure recherchée ). Vendus aux laboratoires par des fabricants - - Mais la technique utilisée pour la croissance de la moisissure est la même. milieu de Czapek milieu extrait de malt milieu à la farine d 'avoine etc .... Mais en Sciences rien n’ est simple , cette technique facile de mise en œuvre donnera comme résultat la présence de Penicillium et de Rizopus ; Si on veut se faire développer d’ autres moisissures il faudra réaliser des mélanges nutritifs plus complexes ( ils sont nombreux et dépendent de la moisissure recherchée ). Vendus aux laboratoires par des fabricants - - Mais la technique utilisée pour la croissance de la moisissure est la même. Références Moisissures utiles et nuisibles B Botton Masson1990 Détection et isolation des moisissures du sol P Davet INRA Dominique.

Lignification Topinambour Tige évolution au cours de l’année Le topinambour ( Helianthus tuberosus) est une plante de la famille des asteraceae bien connue Ces fleurs sont décoratives et ses tubercules sont comestibles et toujours présents sur les étals des marchés Sa croissance est rapide au printemps la tige est très souple -Cette tige depasse les 2 métres en automne et devient particuliement rigide - Comment expliquer cette rigidification ? Coupe faite le 12 Mai - (la tige atteint les 15 cm de haut ) A--Epiderme B –Parenchyme cortical C –Cylindre central D –Phloème E --Cambium F –Xylème G –Rayons médullaires H –Parenchyme medullaire Coupe faite le 16 juin Zone corticale A—Epiderme sur lequel sont apparus des trichomes (A’) B –Parenchyme cortical : son épaisseur a déjà beaucoup diminué. C –Cylindre central. Il se situe de plus en plus vers la périphérie au dépend de la zone corticale Axe vasculaire D –Phloème E –Cambium qui assure la croissance en centrifuge du Phloème et en centripète du Xylème Zone médullaire F –Rayons médullaires G –Parenchyme médullaire Coupe faite le 6 septembre A--Epiderme B –Parenchyme cortical : Axe vasculaire C –Phloème qui se lignifie D –Cambium E --Xylème F –On note la disparition progressive des rayons médullaires cellulosiques qui sont remplacés par l’apparition de faisceaux collatéraux lignifiés ce qui augmente la rigidité de la tige .On noter aussi le début de lignification des rayons medullaires qui restent ( couleur rosé ) F –Xylème Zone médullaire G –Parenchyme médullaire qui tend à disparaitre dans son centre Coupe faite le 5 Octobre (la tige atteint 1,90m) Zone corticale A—Epiderme Il s’est épaissi. B –Parenchyme cortical : Il a quasiment disparu. C –Cylindre central. Touche désormais l’écorce. Axe vasculaire D –Phloème .Il est totalement lignifié. E –Cambium Il s’est aussi lignifié (le diamètre de la tige est désormais fixé et cette lignification augmente la résistance de cette tige.) Zone médullaire F –On note la disparition des rayons médullaires cellulosiques qui sont remplacés par des faisceaux collatéraux lignifiés ). Conclusion La rigidité de la tige est liée au développement progressif de la lignification Ce processus de lignification débute très tôt dans l’année avec les vaisseaux de Xylème et s’ étend au Phloème puis aux cambiums . Par ailleurs en même temps que le parenchyme cortical se raréfiait sont apparus au cours de développement des faisceaux collatéraux qui se sont aussi lignifiés ( ces faisceaux collatéraux se sont développés au dépend des rayons médullaires cellulosiques qui sont de moindre résistance ). La lignification est donc un processus évolutif tout au long du cycle de développement de la tige du topinambour. Definition de Wikipedia La lignine (du latin lignum qui signifie bois) est une biomolécule, plus précisément une famille de macromolécules polyphénoliques, qui est un des principaux composants du bois avec la cellulose et les hémicelluloses. Ce biopolymère est présent principalement dans les plantes vasculaires et dans quelques algues rouges coralligènes, ce qui suggère une convergence évolutive de la biosynthèse des lignines entre ces algues et les trachéophytes. Ses principales fonctions sont de conférer de la rigidité et de la résistance mécanique aux parois cellulaires, ainsi que d'apporter une imperméabilité à l'eau et une résistance à la décomposition. **************************** Remarque technique sur cette observation : Le protocole de coloration a toujours été le même mais les résultats ne sont pas stables Pour les 4 préparations on a procédé de la manière suivante et pourtant les colorations obtenues sont vraiment différentes. Coupe autour de 120 µm Bain dans un mélange alcool/ acide acétique / formol 10 minutes ‘(AFA). Rinçage puis Eau de Javel du commerce durée jusqu’ au blanchiment des échantillons. Rinçage coloration avec un mélange (solution de safranine 3 gtt + eau 6 gtt + Solution d’Acridine 2 gtt ) 3 minutes Rinçage puis bain dans une solution d’Alun de Potasse 7 % 3 minutes Rinçage coloration avec le mélange (Astra Bleu 2 gtt + 6 gtt d’eau + Bleu Alcian 2 gtt ) 2 minutes Déshydratation avec un mélange Alcool 95 + Fotonal 1% (pour éviter les bulles d’air) Xylène quelques gouttes sur la lame (pour éviter les bulles d’air) Montage Euparal Explication possible un manque de rigueur dans les temps de manipulation des échantillons lors des différentes étapes ( et peut-être 1 goutte de plus ou de moins par mélange - mais la manipulation de la pipette Pasteur ‘n’est pas aussi évidente qu’ il y paraît ) . Dominique.

Film biologique Chilomonas Dans le jardin il y a un seau qui me sert à transporter les mauvaises herbes – la chaux - les fruits avariés et toutes sortes de choses Ce seau est resté sans emploi durant un certain temps - se remplissant doucement de l’ eau de pluie - ( mais pas depuis 15 jours car dans ce coin de Normandie la sécheresse s’ est installée ) Il y a quelques jours est apparu un film orange à sa surface. Ce milieu turpide révèle un Ph à 8,5 soit basique La face d’ ‘ une lame est posée sur la surface. Celle-ci est examinée au X 100 Sur cette photo on constate la présence de deux types d éléments dominants --A -la présence de protistes qui sont extrémement mobiles --B-- la présence de microbes Le protiste Examen au X 600 - ( le problème est que pour les forts grossissements tout ce petit monde bouge beaucoup ). Taille 32µm de long A - Ce protiste est porteur de deux flagelles à situation apicale B - A la base de ces flagelles il existe une dépression le cytopharynx C - Le noyau est situé dans la partie postérieure D Le cytoplasme est bourré de grains ( d’ amidon ?) E Il existe une vacuole contractile Cette description peut correspond au genre Chilomonas Dans le précis de Protistologie on peut lire « les plastes sont pariétaux de couleur souvent vert olive mais parfois brune , rouge ou même bleue » ce qui explique la coloration brune orangée du film ( l’eau en dessous du film est transparente ) . Classification: Empire: Eukaryota Kingdom: Chromista Subkingdom:Hacrobia Phylum Cryptista Subphylum: Rollomonadia Class: Cryptophyceae Order :Cryptomonadales Family: Cryptomonadaceae Genus :Chilomonas Les microbes Il est réalisé une coloration de Gram : technique violet de Gentiane 30 secondes - rincer - Lugol 20 secondes - rincer - Alcool 95 pour décolorer 5 à 10 secondes –Fuscine 30 secondes - Séchage à 40 °C Examen X 900 On obtient un résultat Gram négatif pour un microbe de type coccus associés par 2( Diplocoque ) . Conclusion : Les films biologiques sont en fait des milieux complexes - dans celui-ci il y a deux espèces dominantes Un diplocoque gram négatif et un protiste du genre Chilomonas . Il y a probablement d’ autres espèces mais elles ne sont pas facilement identifiables en raison du surpeuplement par la population de cocci et de protistes . Une autre observation avait déjà été faite de ce phénomène de film biologique avec pour peuplement dominant une algue https://forum.MikrOscOpia.com/topic/13864-algue-sur-une-mare/?hl=%2Bfilm+%2Bbiologique Références: https://eol.org/pages/49278345 Précis de protistologie de Pierre de Puytorac et coll edition Boubée 1997 – ( on prend conscience de la puissance des études qui ont été faite au 20éme siècle sur les protistes ( surtout en microscopie électronique ) – mais pour un amateur ce livre est illisible Dominique. dd

Bonsoir Tryphon Je ne contredis pas - ton hypothèse en regard de la publication me semble seulement avoir une probabilité modeste . Mais cette situation est difficile devant l' accumulation de beaucoup d' imprécisions . . Amicalement Dominique

Bonsoir Jean -Marie et Tryphon Tryphon ton hypothèse est , en effet, correcte mais n' est pas acceptable si on se réfère au site suivant https://player.slideplayer.com/15/4736248/# il faut cliquer sur l'image pour les faire défiler Merci Jean - Marie pour l 'information . D'aprés cette publication on pourrait le classer parmi l' espéce Diphtherophora lata Amicalement Dominique

Bonsoir Jean - Marie Connais tu un site pour la reconnaissance des vers ? Je sais que l' image du pharynx est un élément important pour la détermination ( en agrandissant l' image on pourrait y trouver les indices nécessaires ) . Amicalement Dominique.

Les hyphes sont septés ( c’est à dire cloisonnés entre deux cellules fongiques ). On constate des cellules conidogénes ( production de spores directemement d 'une cellule d' hyphe . Ces aspects sont compatibles avec une moisissure du genre Microdochium . Cette moisissure est bien connue des cultivateurs puisqu’ elle fait partie des agents responsables de la Furasiose .Il s’agit d’ une maladie cryptogamique du blé . La fusariose des épis est provoquée par plusieurs espéces de fungus appartenant aux genres Microdochium et Fusarium L’infection entraîne souvent le blanchiment de tout ou partie de l’épi . La fusariose qui affecte l’épi peut entraîner des pertes de rendement pouvant aller de 30 à 70 %. Ces pertes sont dues à la nécrose précoce des épis et à des grains mal remplis et déformés; Une diminution de la qualité boulangère et du taux de germination. Les fusarioses sont à l’origine des mycotoxines. Prélèvement dans la partie profonde Ce prélèvement met en évidence la présence d’une grande quantité de vers Il existe un vers plat de plus grande taille qui se déplace sur la lame - il y en a très peu . sur la petite photo de droite on met en évidence la différence de taille entre les deux espèce - il y a une erreur sur le photo de droite : le vers plat fait 0,950 mm (soit une longueur un peu plus longue que le vers rond ) Je ‘n’ ai pas trouvé le nom de ces deux espèces . Les autres moisissures qui se sont développées sur le milieu de culture . A gauche - Sporange et Sporangiophore de Rhizopus ( en bas à gauche examen en episcopie ) A droite - Pénicillium Après 15 jours d’ évolution l’aspect de la pêche a changé - la couche de moisissures a disparu ou s’ est considérablement atténuée - par contre il existe une couverture grise feutrée dont on fait le prélèvement . Il s’agit d’ une colonie de Levures dont le développement a été permis par les modifications des tissus de la pomme sous l’effet de la moisissure et des bactéries . Enfin on constate comme à chaque fois qu’un fruit est laissé à pourrir au grand air le développement de drosophiles avec la présence à la base de la pêche d’un grand nombre de pupes https://forum.MikrOscOpia.com/topic/18780-trompe-mouche-drosophile/?hl=drosophile La pourriture d’un fruit devient un microcosme pour les saprophytes qui trouvent leur carbone dans la matière organique morte Ce monde est surtout dominé par les moisissures et les bactéries - J’ ai laissé le milieu évoluer - Après 15 jours le Penicillium et le Rizopus se sont installés en maîtres . puis ont quasi disparu pour être remplacés par une vaste colonie de levures - Après 15 jours les drosophiles sont toujours là. Ref Czapek https://fr.sperohope.com/agar-czapek-fundamento Fusariose du blé https://mycolab.pp.nchu.edu.tw/rice_fungi/species_info.php?species_name=Microdochium%20poae htt W. Microdochium trichocladiopsis (ex-type CBS 623.77). Scale bars: H = 100 μm; G = 50 μm; others = 10 μm.ps://plantpathogen.org/homepage/38-microdochium https://www.gene.affrc.go.jp/databases-micro_images_detail_en.php?id=30774 Dominique .